导读:本文包含了萼脊兰论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:萼脊兰,FPPS基因,克隆,表达分析
萼脊兰论文文献综述
蒋素华,王默霏,郝平安,袁秀云,马杰[1]（2018）在《萼脊兰FPPS基因的克隆及表达分析》一文中研究指出为了深入研究兰科植物花香的调控机制,该研究以萼脊兰为材料,利用RACE技术克隆萼脊兰花香物质的关键酶基因FPPS的全长序列并对其进行生物信息学分析和时空表达分析。结果显示:FPPS基因全长为1 317 bp,开放阅读框(ORF)长度为1 047 bp,编码348个氨基酸(GenBank登录号为MG018616)。FPPS编码的蛋白质为亲水性蛋白,等电点(pI)为5.11。萼脊兰FPPS氨基酸序列与春兰的相似性为92%,与霍山石斛的相似性为90%。FPPS蛋白分布于线粒体、叶绿体和分泌途径中,且可信度为3。预测FPPS蛋白质结构功能,可能有意义的功能包括翻译、氨基酸的生物合成、脂肪酸代谢和辅酶因子的生物合成等,他们的几率分别是4.666、4.108、3.689、3.040;对其蛋白质二级结构进行预测,α螺旋占39.37%,无规则卷曲占43.10%,延伸链占17.53%;以4kk2.1.A为模板进行蛋白质的叁维结构预测,与FPPS蛋白一致性为72.14%。荧光实时定量PCR结果显示,FPPS基因在盛花期的花瓣中表达量最高,时空特异性明显,为研究萼脊兰花香成分和花香分子生物学打下了良好基础。(本文来源于《分子植物育种》期刊2018年23期）
蒋素华,邓祖丽颖,郝平安,王默霏,袁秀云[2]（2017）在《萼脊兰AGAMOUS(AG)基因的克隆与表达分析》一文中研究指出通过对萼脊兰AGAMOUS(AG)基因进行结构、功能分析、克隆和AG基因的表达调控等方面的探究,发现,萼脊兰AG的氨基酸序列属于植物特有的MIKC型MADS-box的C类基因,该基因c DNA全长1 002 bp,包含一个702 bp的开放阅读框,该基因命名为AG(登录号KY744276),共编码233个氨基酸。蛋白序列比对和进化树分析表明,AG蛋白与蝴蝶兰蛋白一致性最高,进化距离最近。二级结构分析表明,该蛋白分子属于亲水性蛋白,其中α螺旋占48.93%,延伸链占11.59%,不规则卷曲占39.48%。实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析表明,AG基因在花蕾和蕊柱中表达量很高,说明AG基因的表达具有组织特异性,在ABCDE模型中属于C类基因的特征非常明显,控制着雄蕊和雌蕊的发育。(本文来源于《河南农业大学学报》期刊2017年06期）
许申平,蒋素华,梁芳,王墨霏,袁秀云[3]（2016）在《萼脊兰光合特性的初步研究》一文中研究指出以萼脊兰为材料,利用Li-6400光合测定系统对其叶片的光合特性进行了研究。结果表明:萼脊兰的CO2交换方式具景天酸代谢途径(CAM)的特点,叶片净CO2吸收速率在凌晨0:00左右达到最大值,可滴定酸的积累在8:00左右达到顶峰。在晴天的上午,萼脊兰的最适光照强度为400~600μmol/(m2·s),其叶片的净CO2吸收速率达到2.92μmol/(m2·s)。在最适光强条件下,温度在25℃,CO2浓度为800~1 000μmol/mol时,最利于萼脊兰叶片净CO2的吸收。总的来说,萼脊兰属兼性CAM兰花,这种光合特性体现了其作为一种热带兰花对生长环境的高度适应性。(本文来源于《热带作物学报》期刊2016年06期）
蒋素华,王默霏,宋彩霞,梁芳,李艳辉[4]（2016）在《萼脊兰EF1α基因片段的克隆及序列分析》一文中研究指出为探明萼脊兰EF1α基因在生长发育过程中的生理功能和作为内参基因的稳定性及适用性,根据NCBI中植物翻译延长因子同源核苷酸保守序列设计简并引物,以萼脊兰叶片为试验材料,采用RNAprep多糖多酚植物总RNA提取试剂盒提取RNA,利用RT-PCR技术克隆翻译延伸因子EF1α,并进行生物信息学分析。结果表明:EF1α基因长620bp,编码206个氨基酸,编码的蛋白为亲水性蛋白,相对分子质量为23.16KD,等电点为8.50;经二级结构分析,α-螺旋占29.61%,延伸链占31.55%,无规则卷曲占38.83%;亚细胞定位在细胞质;EF1α基因与朵丽蝶兰杂交品种翻译延伸因子蛋白的一致性较高,进化距离最近。在GenBank登录号为KT223116。(本文来源于《贵州农业科学》期刊2016年05期）
蒋素华,梁芳,王洁琼,李艳辉,王默霏[5]（2015）在《萼脊兰TUB基因片段的克隆及序列分析》一文中研究指出为了给筛选萼脊兰内参基因和研究TUB基因的生理功能提供研究基础,对萼脊兰TUB基因片段进行克隆与序列分析。采用CTAB法提取萼脊兰盛花期花瓣总RNA,并运用RT-PCR方法克隆萼脊兰TUB基因序列,长度为1 055 bp,编码351个氨基酸残基,氨基酸序列中存在微管蛋白的保守区域GGGTGSG。序列分析结果表明:与其他已登录物种的TUB基因相比,其核苷酸序列的同源性达75%~96%,与朵丽蝶兰(JN185665.1)同源性高达96%,氨基酸序列的同源性也在96%以上,且与单子叶植物的同源序列表现出较高的相似性。在Gen Bank注册,登录号为KP686397。(本文来源于《华北农学报》期刊2015年04期）
蒋素华,李艳辉,王洁琼,梁芳,王默霏[6]（2015）在《萼脊兰总RNA提取方法的比较研究》一文中研究指出采用Trizol法、CTAB法、RNA prep Pure Plant Kit方法分别从萼脊兰的根、叶、花葶、花萼、花瓣、唇瓣、柱头中提取总RNA,比较3种总RNA提取方法的优劣,分析所提取萼脊兰不同组织总RNA质量高低。结果显示:CTAB法提取的RNA得率最高,完整性好,凝胶电泳泳道无杂质,条带单一,可以满足荧光定量PCR的试验需要。(本文来源于《河南农业大学学报》期刊2015年04期）
蒋素华,袁秀云,王洁琼,武振江,张国付[7]（2015）在《萼脊兰SeAP1-like基因的克隆与表达载体构建》一文中研究指出根据NCBI网站上萼脊兰AP1-like全长基因序列设计引物,采用RT-PCR法从萼脊兰花瓣中扩增Se AP1-like基因,对扩增产物进行克隆和测序。结果表明,获得的萼脊兰Se AP1-like基因为743 bp,编码247个氨基酸。将Se AP1-like基因插入p CAMBIA1304载体中,经PCR、双酶切鉴定,证实重组表达质粒中含有目的片段,表明成功构建了高效植物表达载体p CAMBIA1304-Se AP1。对Se AP1-like基因的结构域和所表达蛋白质的亲水性进行了分析,并预测了该基因所表达蛋白的二维结构。结果显示,该基因包含MADS-box和K-box保守域,属于MADS-box基因家族,该蛋白分子属于亲水性蛋白。二级结构分析表明,其包含57.49%的α螺旋、6.07%的延伸链、36.44%的不规则折迭。(本文来源于《河南农业科学》期刊2015年01期）
崔波,蒋素华,刘佳,田云芳,袁秀云[8]（2013）在《萼脊兰AP1-like基因的克隆与表达分析》一文中研究指出采用RT-PCR和RACE技术从萼脊兰(Sedirea japonica)花瓣中分离到1个MADS-box A类基因,该基因命名为AP1-like(登录号JQ776636)。AP1-like基因的cDNA全长1 221bp,包含1个753bp的开放阅读框(ORF),共编码250个氨基酸。蛋白序列比对和进化树分析表明,AP1-like蛋白与蝴蝶兰ORAP11蛋白的一致性为96%,进化距离最近。二级结构分析表明,该蛋白分子属于亲水性蛋白,其中有53.60%的α螺旋、7.20%的延伸链、39.20%的不规则折迭。实时荧光定量PCR分析表明,萼脊兰AP1-like基因在盛花期的根和叶中表达量最高;在生殖器官中花蕾期花葶的表达量最高,其次是花蕾;盛花期中花葶的表达量最高,子房和合蕊柱的表达量次之,萼片、花瓣、唇瓣均有微量表达。研究认为,AP1-like可能在调控植物由营养生长向生殖生长过渡阶段及子房的建成中起重要作用。(本文来源于《西北植物学报》期刊2013年09期）
张国付[9]（2013）在《萼脊兰AP1（APETALA1）基因的序列分析及表达特性研究》一文中研究指出萼脊兰（Sedirea japonica）为兰科（Orchidaceae）萼脊兰属（Sedirea）植物，其花小而素雅，花色清丽，且具有奇妙的幽香，观赏期长，养护简单且耐寒，是一种观赏价值很高的附生兰。近年来随着分子生物学在花卉相关研究及其在育种过程中的应用，兰科植物相关基因特别是开花相关基因及其表达也成为当今研究的热点，但是对萼脊兰开花相关基因的研究还很少。本研究以萼脊兰的花瓣为材料，采用RT-PCR和RACE技术等方法，克隆出了萼脊兰与开花相关的AP1（APETALA1）基因的保守序列及其全长序列开放阅读框（ORF）的扩增，并对该序列进行生物信息学分析；利用实时荧光定量PCR技术分析该基因在生长发育过程中不同时期不同部位的表达特性，并对萼脊兰AP1（APETALA1）基因进行了植物表达载体的构建。主要研究结果如下：1萼脊兰AP1（APETALA1）基因cDNA全长序列的克隆及序列分析以萼脊兰的花期花瓣为材料，通过植物总RNA提取试剂盒提取萼脊兰花期花瓣总RNA，并运用RT-PCR方法克隆了萼脊兰AP1（APETALA1）基因的保守序列片段，其中与蝴蝶兰、建兰、文心兰的同源性分别为：99%，90%、88%。采用RACE技术的方法扩增3’端和5’端，得到一条萼脊兰AP1（APETALA1）基因的全长序列，长度为1221bp，其中开放阅读框（ORF）为753bp，编码250个氨基酸，5′端非编码区为66bp，3′端非编码区为402bp。采用生物学信息分析方法对萼脊兰AP1基因氨基酸理化性质及同源性进行分析，并构建系统发育树，对保守区及二级结构进行分析及预测。2萼脊兰AP1（APETALA1）基因植物表达载体pCAMBIA1304-EJAP1的构建将测序结果正确的pMD19-EJAP1和质粒pBI221经限制性内切酶SmaⅠ/XbaⅠ双酶切后，经T4DNA连接酶连接到中间载体pBI221上，构建中间载体质粒pBI221-EJAP1。再将酶切结果正确的中间载体pBI221-EJAP1和植物表达载体pCAMBIA1304经限制性内切酶PstI/EcoRI双酶切后，将回收的目的基因片段与植物表达载体pCAMBIA1304用T4DNA连接酶连接，构建植物重组表达质粒pCAMBIA1304-EJAP1。经过菌落筛选和PCR双酶切验证，最终得到萼脊兰AP1（APETALA1）基因的植物表达载体pCAMBIA1304-EJAP1,为遗传转化及杂交验证打下基础。3采用实时荧光定量PCR技术对萼脊兰AP1基因进行时空表达分析分别提取萼脊兰不同发育阶段不同部位组织的RNA，反转录为cDNA进行实时荧光定量PCR，按照Rel. Exp=2~(-ΔΔCt)公式进行目的基因相对表达量的计算，结果发现，萼脊兰AP1基因在苗期、花蕾期、盛花期的营养器官和生殖器官中都有表达，且具有不同的表达丰度特性。在苗期，根和叶中表达量较低；在花蕾期，根和叶中的表达量与苗期相似，具有较低的表达量；而花葶和花蕾中表达量较高，花葶中表达量最高；在盛花期，根中的表达量比叶高，仍以花葶的表达量为最高，在花器官中，AP1基因在花瓣、萼片、唇瓣有微量表达，在蕊柱有较高表达，在子房中的表达量最高。结果分析表明，萼脊兰AP1（APETALA1）基因不仅在启动花分生组织和花器官分化中起着重要作用，而且在也参与其它组织的发育。(本文来源于《河南农业大学》期刊2013-05-01）
袁秀云,田云芳,蒋素华,崔波[10]（2012）在《萼脊兰Actin基因片段的克隆及序列分析》一文中研究指出从萼脊兰叶片中克隆Actin基因,为研究其生理功能及其他基因在萼脊兰中的表达和调控奠定基础。根据GenBank中登录的植物肌动蛋白基因同源核苷酸保守序列设计简并引物,以萼脊兰叶片总RNA为模板,利用RT-PCR技术得到了3个Actin基因片段。序列分析结果表明,3个Actin基因片段长度均为1062bp,编码354个氨基酸,具有Actin基因的功能位点;与其他植物同源序列进行分析表明,其核苷酸序列的同源性在80%以上,氨基酸序列的同源性在96%以上。本研究中得到的3个基因序列是Actin基因的同源片段,分别命名为SeACT1、SeACT2和SeACT3,并在GenBank注册,登录号分别为JN981138、JN981139和JN981140。(本文来源于《中国农学通报》期刊2012年13期）
萼脊兰论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
通过对萼脊兰AGAMOUS(AG)基因进行结构、功能分析、克隆和AG基因的表达调控等方面的探究,发现,萼脊兰AG的氨基酸序列属于植物特有的MIKC型MADS-box的C类基因,该基因c DNA全长1 002 bp,包含一个702 bp的开放阅读框,该基因命名为AG(登录号KY744276),共编码233个氨基酸。蛋白序列比对和进化树分析表明,AG蛋白与蝴蝶兰蛋白一致性最高,进化距离最近。二级结构分析表明,该蛋白分子属于亲水性蛋白,其中α螺旋占48.93%,延伸链占11.59%,不规则卷曲占39.48%。实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析表明,AG基因在花蕾和蕊柱中表达量很高,说明AG基因的表达具有组织特异性,在ABCDE模型中属于C类基因的特征非常明显,控制着雄蕊和雌蕊的发育。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
萼脊兰论文参考文献
[1].蒋素华,王默霏,郝平安,袁秀云,马杰.萼脊兰FPPS基因的克隆及表达分析[J].分子植物育种.2018
[2].蒋素华,邓祖丽颖,郝平安,王默霏,袁秀云.萼脊兰AGAMOUS(AG)基因的克隆与表达分析[J].河南农业大学学报.2017
[3].许申平,蒋素华,梁芳,王墨霏,袁秀云.萼脊兰光合特性的初步研究[J].热带作物学报.2016
[4].蒋素华,王默霏,宋彩霞,梁芳,李艳辉.萼脊兰EF1α基因片段的克隆及序列分析[J].贵州农业科学.2016
[5].蒋素华,梁芳,王洁琼,李艳辉,王默霏.萼脊兰TUB基因片段的克隆及序列分析[J].华北农学报.2015
[6].蒋素华,李艳辉,王洁琼,梁芳,王默霏.萼脊兰总RNA提取方法的比较研究[J].河南农业大学学报.2015
[7].蒋素华,袁秀云,王洁琼,武振江,张国付.萼脊兰SeAP1-like基因的克隆与表达载体构建[J].河南农业科学.2015
[8].崔波,蒋素华,刘佳,田云芳,袁秀云.萼脊兰AP1-like基因的克隆与表达分析[J].西北植物学报.2013
[9].张国付.萼脊兰AP1（APETALA1）基因的序列分析及表达特性研究[D].河南农业大学.2013
[10].袁秀云,田云芳,蒋素华,崔波.萼脊兰Actin基因片段的克隆及序列分析[J].中国农学通报.2012