导读:本文包含了胡桃楸树皮论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:胡桃楸,H22荷瘤小鼠,T细胞亚群
胡桃楸树皮论文文献综述
古乐,曹秀格,李岩[1]（2016）在《胡桃楸树皮抗肿瘤有效成分对H_(22)荷瘤小鼠T细胞亚群的影响》一文中研究指出为测定胡桃楸树皮提取物(HT)抗肿瘤有效成分对H_(22)荷瘤小鼠T细胞亚群的影响,将昆明小鼠随机分为HT高剂量组、HT低剂量组、阳性药环磷酰胺组、模型组和正常组,采用接种法复制H22肿瘤移植模型。利用荧光标记抗体-流式细胞术检测HT对建立的H22荷瘤小鼠模型外周血中CD4~+/CD8~+细胞亚群比值变化;ELISA法检测CD4~+细胞所分泌细胞因子IL-4和IFN-γ的含量,以测定Th1/Th2细胞亚群比例。结果显示,与阳性药注射用环磷酰胺(CTX)相比,HT高、低剂量组能显着降低机体CD8~+亚群比例(P<0.01),HT低剂量组可明显提高CD4~+/CD8~+比值(P<0.05)。HT高、低剂量组的IL-4含量显着低于阳性药CTX组(P<0.001),明显低于模型组(P<0.05)。HT高剂量组的IFN-γ/IL-4水平明显高于阳性药CTX组(P<0.05)。研究表明,胡桃楸树皮提取物具有明显的抑瘤作用,能保护胸腺和脾脏,能减轻荷瘤机体的T细胞免疫功能的损伤。(本文来源于《科技导报》期刊2016年11期）
王莲萍,赵昱玮,张莲珠,吕雪峰,南敏伦[2]（2010）在《胡桃楸树皮及其果皮超临界CO_2萃取物的GC-MS分析》一文中研究指出目的分析胡桃楸树皮超临界CO2流体萃取成分,并与果皮相比较。方法超临界CO2流体萃取胡桃楸树皮与果皮,GC-MS技术分析两种萃取物的化学成分。结果从胡桃楸树皮与果皮中分别鉴定出28种和34种化学成分,其中有13种为二者共有成分(主要为烃类和有机酸)。结论胡桃楸树皮与果皮超临界CO2流体萃取物有相同成分,但不同的成分较多。(本文来源于《中国医药指南》期刊2010年34期）
李玮,李岩,夏爱华[3]（2010）在《高效液相法测定胡桃楸树皮中胡桃醌的含量》一文中研究指出目的建立高效液相检测法(HPLC)测定胡桃楸中胡桃醌含量的方法。方法色谱柱为迪马反相C18柱(250×4.6mm);流动相:甲醇-水(70:30);体积流量:1.0mL·min-1;检测波长:261nm。结果胡桃醌线性范围为0.01～0.21mg·mL-1(r=0.9992,n=5),平均回收率为=98.82%;RSD=1.97%。(n=6)。结论该方法准确、简便,可用于该药材的质量控制。(本文来源于《2010年中国药学大会暨第十届中国药师周论文集》期刊2010-11-01）
王莲萍,张莲珠,吕雪峰,刘永强,赵全成[4]（2010）在《胡桃楸树皮的研究进展》一文中研究指出目的综述胡桃楸树皮近年来有关化学成分及药理作用等方面的研究进展。方法查阅近年来公开发表的论文、专着等资料,对胡桃楸树皮的化学成分及药理作用进行概述。结果胡桃楸树皮含有较多的活性成分,具有抗辐射、抗氧化及抗肿瘤等作用。结论胡桃楸树皮是一种比较有开发潜力的药材。(本文来源于《西北药学杂志》期刊2010年03期）
李玮,李岩,夏爱华[5]（2009）在《高效液相法测定胡桃楸树皮中胡桃醌的含量》一文中研究指出目的建立高效液相检测法(HPLC)测定胡桃楸中胡桃醌含量的方法。方法色谱柱为迪马反相C18柱(250×4.6mm);流动相:甲醇-水(70:30);体积流量:1.0mL·min-1;检测波长:261nm。结果胡桃醌线性范围为0.01～0.21mg·mL-1(r=0.9992,n=5),平均回收率为=98.82%;RSD=1.97%。(n=6)。结论该方法准确、简便,可用于该药材的质量控制。(本文来源于《2009年中国药学大会暨第九届中国药师周论文集》期刊2009-11-21）
田玉玲[6]（2009）在《胡桃楸树皮黄酮类化合物提取纯化及其抗肿瘤作用的研究》一文中研究指出本研究利用特殊毒性试验即小鼠骨髓细胞微核试验(MNT)从诱变效应、抗诱变效应对胡桃楸树皮(JMMB)安全性进行评价。受试药物设六个剂量组、阴性对照组(生理盐水,NS)和阳性对照组(环磷酰胺,CP,40mg/ml)。试验结果显示微核率阴性对照组为2.65‰,阳性对照组为28.82‰。JMMB水煎液各剂量组(1/8LD50g/kg,1/4LD50g/kg,1/2LD50g/kg)诱发的微核率与正常对照组比较无明显增加(P>0.05)。JMMB水煎液各剂量组(1/8LD50g/kg+CP,1/4LD50g/kg+CP,1/2LD50g/kg+CP)对CP所致的微核率随着药物浓度的增加微核率有所降低,但是与阴性对照组比较,差异明显(P<0.01);与阳性对照组比较,低剂量组差异无显着性(P>0.05),中剂量组和高剂量组差异显着(P<0.05)。各剂量组之间比较,差异显着(P<0.05)。说明JMMB水煎液无明显诱发微核率增加作用,对CP诱发的微核率有一定抵抗作用,但是不能完全抵抗诱变剂诱发的微核突变。因此在本实验条件下,JMMB对遗传物质无诱变作用,且具有一定抗诱变作用,并有量效关系。本实验还对JMMB总黄酮(Flavonoids)的提取分离纯化工艺和药效学进行了研究。通过超声波提取法,采用60%乙醇、固液比1:15、提取1次时间为30min、温度为75℃的最佳提取工艺提取总黄酮。进一步利用D101大孔树脂柱层析分离纯化总黄酮,条件为:上样速度2BV/h,洗脱流速3BV/h,洗脱剂先水洗4BV,再用5BV50%乙醇洗脱。最终获黄酮纯度为48.98%,纯度提高了5.25倍。总黄酮药效研究通过CCK-8法,确定JMMB总黄酮对白血病细胞K562,胃癌细胞BGC-823有增殖抑制作用,其细胞半效应量IC50分别是0.0223mg/ml,0.0648mg/ml。通过绘制生长曲线分析确定总黄酮对两种肿瘤细胞的增殖抑制作用随着药物浓度的增加而增强(P<0.05)。利用流式细胞术检测总黄酮作用后的细胞周期和细胞凋亡。结果显示在IC50 (0.0223mg/ml)剂量下,K562细胞大部分被阻滞在S期,在IC50 (0.0648mg/ml )剂量时BGC-823细胞大部分被阻滞在G0/G1期。经过不同剂量(1/2 IC50、IC50、2IC50)总黄酮作用K562细胞,给药剂量组与阴性对照组比较,总凋亡率明显提高(P<0.01),各组晚期凋亡比率与阴性比较差异显着(P<0.05),说明JMMB总黄酮对K562细胞诱导凋亡作用明显,发生在细胞晚期,随之药物浓度增加凋亡率增高。BGC-823细胞经过低中高剂量(1/2 IC50、IC50、2IC50)总黄酮作用,给药各剂量组与阴性对照组比较,高剂量组总凋亡率明显增高(P<0.01),且早期凋亡比率高于阴性对照组(P<0.05),说明JMMB总黄酮对BGC-823细胞诱导凋亡发生在细胞早期,药物浓度增加凋亡率相应升高。(本文来源于《吉林大学》期刊2009-04-01）
潘丽艳,郭喜平,李淑红,崔黎明,刘冰[7]（2009）在《胡桃楸树皮提取物对SMMC-7721、MCF-7和A549肿瘤细胞的抑制作用及其机制》一文中研究指出目的:观察胡桃楸树皮提取物(JMME)对SMMC-7721、MCF-7和A549 3种肿瘤细胞的生长抑制作用,确定其抑瘤的药用价值,通过检测JMME诱导肿瘤细胞凋亡、抑制端粒酶活性变化阐述其抑瘤机制。方法:分别以25、50、100、200、400和800 mg.L-1JMME作用于体外培养的SMMC-7721、MCF-7和A549肿瘤细胞72 h,采用MTT法检测生长抑制率;以200 mg.L-1JMME作用于体外培养的SMMC-7721、MCF-7和A549,于倒置显微镜下观察细胞形态学变化;琼脂糖凝胶电泳法检测细胞凋亡;PCR-ELISA法检测端粒酶活性。结果:不同浓度JMME(25、50、100、200、400和800 mg.L-1)对SMMC-7721的细胞生长抑制率(%)分别为13.06、21.77、29.88、41.74、69.82和78.08;对MCF-7的抑制率(%)为24.91、38.63、49.72、61.84、65.69和81.28;对A549的抑制率(%)为12.32、26.21、41.65、55.38、62.87和80.13;与对照组比较,JMME各浓度作用的3种肿瘤细胞的生长抑制率均升高(P<0.05),抑制率随JMME对SMMC、MCF-7和A549细胞的浓度的增加而增高(P<0.05)。JMME对SMMC、MCF-7和A549细胞的半数抑制浓度(IC50)分别为211.21、111.07和176.20 mg.L-1,对MCF-7的IC50小于其他两种瘤细胞株。经不同浓度JMME作用单位视野内细胞数量明显减少,细胞间隙增大,细胞体积明显缩小,细胞失去原有的形态,胞体皱缩变圆,出现膜发泡现象,对照组无此变化。提取DNA进行琼脂糖凝胶电泳,见DNA Ladder,表明3种肿瘤细胞经不同浓度JMME作用后出现不同程度凋亡。3种肿瘤细胞与阴性对照组比较端粒酶活性升高,而经过JMME作用后端粒酶活性均受到了抑制,抑制率分别为42.86%、73.30%和58.78%。结论:胡桃楸树皮提取物在体外有抗肿瘤活性,其机制可能与其诱导肿瘤细胞凋亡?抑制端粒酶活性有关。(本文来源于《吉林大学学报(医学版)》期刊2009年01期）
张妍[8]（2008）在《胡桃楸树皮有效成分的提取分离与其体外抗肿瘤活性的研究》一文中研究指出中药胡桃楸(Juglans Mandshurica Maxim)为胡桃科胡桃属植物,属落叶乔木,别名有胡桃楸及山核桃等,它的未成熟的新鲜全果外皮称为青龙衣。胡桃楸主要分布于我国东北及华北的海拔在400～1000m的山坡或向阳沟谷中,喜光及湿润的环境。胡桃楸在疏林内天然更新良好,生长较快,在每年的4~6月果实成熟,在8,9月,它的青果、枝皮及种仁均可入药,具有抗菌消炎及抗癌等作用。胡桃楸中含有很多种化学成分,包括核桃醌和大量的鞣质,以及苷类和多缩戊糖等化合物。本实验主要是研究胡桃楸树皮的化学成分,将胡桃楸干燥树皮粉碎,用60%的乙醇溶液提取,蒸除乙醇后的胡桃楸树皮水提取物再用乙醚,乙酸乙酯,水饱和正丁醇萃取,得到各层蒸干萃取物,再采用硅胶柱层析法得到单体化合物。通过理化常数测定及光谱分析鉴定出化合物为:3,5,7,3′,4′-五羟基黄酮。并利用MTT法和XTT法初步筛选出胡桃楸树皮中的该化合物为抗肿瘤成分,该化合物对MGC-803(人胃癌细胞)、HL-60(人早幼粒白细胞)的增殖作用都有较强的抑制作用,其IC50分别是25.4μg/ml,18.9μg/ml。说明该化合物对肿瘤细胞具有杀伤抑制作用。(本文来源于《吉林大学》期刊2008-05-21）
杨赛,赵星宇,李娟,陈永杰,柳旺燕[9]（2007）在《胡桃楸树皮乙醇提取物的抗氧化研究》一文中研究指出目的探讨胡桃楸树皮乙醇提取物(AEBJ)对X线照射损伤小鼠的抗氧化活性。方法将60只雄性健康昆明小鼠随机分为假照射组,照射对照组,高、低剂量照射给药组和高、低剂量单纯给药组共六个试验组,测定小鼠肝组织匀浆中H2O2与MDA的含量。结果高、低剂量AEBJ照射给药组均能抑制照射所致的H2O2的含量增高,高剂量AEBJ照射给药组能抑制照射所致的MDA含量增高,低剂量AEBJ照射给药组对照射所致的MDA含量无影响。结论胡桃楸树皮乙醇提取物对X线照射损伤小鼠具有一定的抗氧化活性。(本文来源于《现代中药研究与实践》期刊2007年06期）
杨赛,赵星宇,李娟,王德洁,巨艳红[10]（2007）在《胡桃楸树皮对红细胞氧化损伤抑制作用及其活性成分探讨》一文中研究指出[目的]观察胡桃楸树皮对红细胞自氧化损伤和H2O2所致的红细胞氧化损伤的抑制作用,同时对活性成分进行定性分析。[方法]用健康成人静脉血制成1%红细胞悬液,加入不同浓度的胡桃楸树皮提取物,以孵育24 h和H2O2为损伤因素,采用比色法测定红细胞的溶血程度来探讨胡桃楸树皮抑制红细胞氧化损伤的作用。采用化学预示法和薄层层析法对胡桃楸树皮活性成分进行分析。[结果]与对照损伤组比较,胡桃楸两种组分的各剂量组都可抑制红细胞的氧化溶血和H2O2所致的氧化溶血,并都呈一定的剂效关系。相同浓度不同组分对红细胞的抑制作用相比,组分1优于组分2;胡桃楸树皮活性成分主要是黄酮、皂苷、蒽醌、酚类及鞣质。[结论]胡桃楸树皮提取物能明显抑制红细胞的氧化损伤;胡桃楸树皮含有黄酮、皂苷、蒽醌、酚类及鞣质等抗氧化活性物质。(本文来源于《现代预防医学》期刊2007年19期）
胡桃楸树皮论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的分析胡桃楸树皮超临界CO2流体萃取成分,并与果皮相比较。方法超临界CO2流体萃取胡桃楸树皮与果皮,GC-MS技术分析两种萃取物的化学成分。结果从胡桃楸树皮与果皮中分别鉴定出28种和34种化学成分,其中有13种为二者共有成分(主要为烃类和有机酸)。结论胡桃楸树皮与果皮超临界CO2流体萃取物有相同成分,但不同的成分较多。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
胡桃楸树皮论文参考文献
[1].古乐,曹秀格,李岩.胡桃楸树皮抗肿瘤有效成分对H_(22)荷瘤小鼠T细胞亚群的影响[J].科技导报.2016
[2].王莲萍,赵昱玮,张莲珠,吕雪峰,南敏伦.胡桃楸树皮及其果皮超临界CO_2萃取物的GC-MS分析[J].中国医药指南.2010
[3].李玮,李岩,夏爱华.高效液相法测定胡桃楸树皮中胡桃醌的含量[C].2010年中国药学大会暨第十届中国药师周论文集.2010
[4].王莲萍,张莲珠,吕雪峰,刘永强,赵全成.胡桃楸树皮的研究进展[J].西北药学杂志.2010
[5].李玮,李岩,夏爱华.高效液相法测定胡桃楸树皮中胡桃醌的含量[C].2009年中国药学大会暨第九届中国药师周论文集.2009
[6].田玉玲.胡桃楸树皮黄酮类化合物提取纯化及其抗肿瘤作用的研究[D].吉林大学.2009
[7].潘丽艳,郭喜平,李淑红,崔黎明,刘冰.胡桃楸树皮提取物对SMMC-7721、MCF-7和A549肿瘤细胞的抑制作用及其机制[J].吉林大学学报(医学版).2009
[8].张妍.胡桃楸树皮有效成分的提取分离与其体外抗肿瘤活性的研究[D].吉林大学.2008
[9].杨赛,赵星宇,李娟,陈永杰,柳旺燕.胡桃楸树皮乙醇提取物的抗氧化研究[J].现代中药研究与实践.2007
[10].杨赛,赵星宇,李娟,王德洁,巨艳红.胡桃楸树皮对红细胞氧化损伤抑制作用及其活性成分探讨[J].现代预防医学.2007