导读:本文包含了杀草强论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:量子点,卟啉,荧光传感器,氟啶胺
杀草强论文文献综述
王月[1]（2017）在《基于卟啉和量子点的荧光传感器检测氟啶胺和杀草强及其作用机制研究》一文中研究指出我国是农业大国,农产品的生产地相对比较分散,农产品的需求量大,农产品流通快,农药残留问题非常严重。氟啶胺是目前仍在大量广泛使用的新型取代苯胺类广谱杀菌剂,杀草强是一种毒性比较强的非选择性化学除草剂,这两种农药对生态环境和人类健康有很大的危害。目前它们的检测方法主要是色谱法以及色谱与质谱联用法等常规仪器分析方法,这些方法不能进行快速、实时、现场检测。因此,建立快速、简单、费用低、可信度高的氟啶胺和杀草强检测方法极其重要。作为一类理想的荧光探针,量子点具有很多优势,如发光效率高、光学可调、激发范围宽、光稳定性好等,目前在生物标记与传感分析等领域得到了非常广泛的应用。卟啉由于其独特的结构和性质,作为敏感物质在物质识别和疾病检测等方面具有重要作用。近年来,荧光化学传感器也已成为分析化学中最为活跃的前沿研究领域之一。基于此,本课题从制备合成荧光传感器的敏感材料量子点和卟啉化合物出发,基于FRET和IFE作用机理,构建多个荧光传感器体系检测实际样品中的氟啶胺和杀草强的含量。主要研究内容如下:(1)高灵敏的识别基团是构建荧光化学传感器的重要前提之一。本文首先设计合成了八种卟啉分子,采用NMR、IR、紫外-可见光谱法和荧光光谱法对卟啉分子进行表征。通过量子化学的密度泛函理论和高斯运算方法,对卟啉分子的结构进行优化,并对其前线轨道能级的HOMO和LUMO轨道能量进行分析讨论,对它们的性能、和氟啶胺的反应活性等进行理论评价,为实验分析提供理论依据。然后研究了八种卟啉分子和氟啶胺的相互作用,结果表明TMaPP与氟啶胺的相互作用结合常数为2.75×10~7L/mol,作用位点数为1.83,都比较大。故选择TMaPP作为氟啶胺检测的识别基团,为后续设计荧光传感器提供前期研究。(2)高质量的荧光量子点是构建荧光传感器的重要基础,决定着荧光传感器的灵敏度。本文首先采用水热法合成了CdS QDs、ZnS:Mn QDs、CdTe QDs以及N,S-CDs四种类型的量子点。然后分别应用XRD、XPS、SEM、TEM、IR以及UV-Vis等方法对量子点进行表征。另外,采用荧光光谱法研究了氟啶胺对它们的猝灭作用,计算出猝灭常数等。根据它们各自的性质特点以及与氟啶胺的相互作用的特点,选择了CdTe QDs和N,S-CDs为本课题的荧光探针,为后续设计荧光传感器提供了材料基础和准备。(3)以N,S-CDs为荧光基团,TMaPP为识别基团,设计并构建了基于FRET效应的比率荧光传感器,建立蔬菜中氟啶胺残留检测的新方法。首先考察了溶剂、TMaPP的浓度以及体系作用时间对N,S-CDs@TMaPP复合体系的影响。在最优化实验条件下,该方法对氟啶胺检测的线性范围为0.01μM-5μM,最低检出限为6.8nM。将该体系应用于实际蔬菜样品中氟啶胺的检测,加标回收率在95.4%-112%之间。实验证明该荧光传感器检测方法具有比较好的选择性、稳定性和实用性。(4)应用叁种不同发射波长的CdTe QDs为荧光基团,TMaPP为识别基团,建立了CdTe QDs_(537nm)@TMaPP、CdTe QDs_(617nm)@TMaPP和CdTe QDs_(637nm)@TMaPP叁个FRET体系检测氟啶胺,确定叁个体系对氟啶胺的检测限。然后应用CdTe QDs_(537nm)@TMaPP体系,构建氟啶胺检测的比率荧光传感器。该传感器的线性范围为0.01μM-5μM,最低检出限为2.3 nM。并将该体系应用于实际蔬菜样品中氟啶胺的检测,加标回收率在95.4%-107%之间,达到了对实际样品检测的要求。同时实验证明该传感器具有非常好的选择性和稳定性。(5)以N,S-CDs荧光基团,Aptamers为识别基团,构建了基于IFE的生物荧光传感器,建立蔬菜和土壤样品中氟啶胺的检测方法。首先,从Aptamers的用量和聚合时间两方面考察N,S-CDs与Aptamers聚合形成N,S-CDs@Aptamers复合体系的实验条件。研究了氧化石墨烯(GO)的用量、pH值和作用时间对N,S-CDs@Aptamers@GO荧光检测体系的影响,进而构建了基于GO对N,S-CDs@Aptamers复合体系IFE效应的生物荧光传感器。在最优化实验条件下,该传感器对氟啶胺检测的线性范围为5-500 nM,最低检出限为0.023 nM。并对蔬菜和土壤样品中氟啶胺残留量进行检测,结果显示氟啶胺的含量都低于0.01ppm,加标回收率在98.6%-105.8%之间,达到了对实际样品检测的要求。同时实验证明该传感器具有非常好的选择性和稳定性,因此该生物荧光传感器具有很好的应用价值。(6)构建了基于CdTe QDs和纳米金(AuNPs)之间IFE效应的荧光传感器,建立水样中杀草强残留检测的新方法。首先考察杀草强与AuNPs、CdTe QDs的相互作用,建立了基于IFE的AuNPs@CdTe QDs对杀草强的检测体系。分别从AuNPs的浓度、pH值以及杀草强与Au NPs的相互作用时间叁个方面对检测体系进行优化。在最优化实验条件下,该体系对杀草强检测的线性范围为9.5-1000 nM,检测限达到4.75 nM,能够满足对杀草强限量(低于0.1μg/L)检测的要求。应用该体系测定五种实际水样中杀草强的含量,加标回收率在97.3%-105.6%之间,达到了定量分析的标准和要求,说明建立的方法具有比较强的实用性。本文建立的四种荧光传感器对实际样品中氟啶胺和杀草强的检测限都远远低于欧盟农药数据库和美国环保署以及我们国家对氟啶胺和杀草强限量的要求。同时采用标准方法HPLC法作为对照试验,与本文所构建的四种荧光传感器的检测结果进行对比分析,结果显示它们之间没有显着性差异,说明本文所建立的四种荧光传感器的精密度和准确度都比较高,具有实现快速、实时、现场检测的应用前景。(本文来源于《重庆大学》期刊2017-10-01）
柳英霞,肖石妹,俞勇,郭岚[2]（2017）在《基于对氨基苯甲酰胺修饰的金纳米粒子比色测定水样中痕量杀草强》一文中研究指出采用柠檬酸钠还原法合成粒径13nm的金纳米粒子,并利用对氨基苯甲酰胺(AMIDE)对其进行表面修饰得到功能化的金纳米粒子(AMIDE-AuNPs)。实验发现,在一定的pH条件下,杀草强能诱导AMIDE-AuNPs聚集,金纳米粒子溶液由酒红色变为蓝色。因此以对氨基苯甲酰胺修饰的金纳米粒子为探针,建立了快速检测杀草强的比色方法。优化后的最佳实验条件为:杀草强与AMIDE-AuNPs反应平衡时间3min,缓冲液pH=4.0。在优化条件下,检测杀草强的线性范围为0.10~0.90mg·L~(-1),检测限(LOD)为0.02mg·L~(-1)。本方法具有简单、快速、灵敏、选择性好等优点,对实际水样中的杀草强进行检测,加标回收率为96.7%~108%,相对标准为1.9%~7.6%。(本文来源于《南昌大学学报(理科版)》期刊2017年04期）
陈玉锋,赵冰[3]（2016）在《杀草强分子的拉曼光谱的密度泛函理论研究》一文中研究指出采用B3LYP杂化泛函,6-31++g(d,p)基组,对杀草强分子的结构进行了优化;通过频率计算,获得了杀草强分子的拉曼光谱,并利用势能函数分布(PED)对拉曼光谱进行了指认;结合SERS光谱推测了杀草强和增强基底之间的吸附方式。(本文来源于《光谱学与光谱分析》期刊2016年S1期）
潘红梅,宣群,韩迪,殷建忠,吴少雄[4]（2016）在《杀草强对人甲状腺Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响》一文中研究指出目的研究杀草强对人甲状腺Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响。方法以100μg/ml杀草强处理Nthy-ori-3-1细胞24 h后,进行全基因表达谱分析,采用实时定量PCR验证芯片结果,并用GO分析和pathway分析芯片结果。结果实时定量PCR验证差异基因表达与芯片结果一致。GO和pathway分析结果显示共检测了41 001个基因,按P<0.005和FC≤0.5或FC≥2的标准筛选,共有20个差异基因涉及44条通路。Agt、cd70、bmp2、arnt2和wint5b基因出现在多条信号通路中。结论杀草强主要影响Nthy-ori-3细胞肿瘤发生相关基因,即上调cd70和wint5b基因表达及下调bmp2和arnt2基因表达,可能是其导致甲状腺肿瘤的机制之一。(本文来源于《环境与健康杂志》期刊2016年09期）
潘红梅,宣群,韩迪,殷建忠,吴少雄[5]（2016）在《杀草强诱导人甲状腺Nthy-ori-3-1细胞肿瘤相关基因表达谱变化》一文中研究指出目的以人甲状腺Nthy-ori-3-1细胞为受试对象,通过差异性表达谱芯片分析,探索杀草强致人甲状腺肿瘤的相关机制。方法以1~100μg/m L杀草强处理Nthy-ori-3-1细胞24 h后,用MTT法检测其对细胞增殖的影响。以100μg/m L杀草强处理细胞24 h后,做基因表达谱分析,并用GO(Gene Ontology)分析和pathway分析芯片结果,用实时定量PCR验证芯片结果。结果 MTT结果显示,所有检测浓度杀草强对Nthy-ori-3-1细胞增殖均无显着影响。芯片结果显示,有90个基因表达显着变化,55个上调,35个下调;GO分析显示,43个基因与生物过程相关(37个上调,6个下调),42个与分子功能相关(37个上调,5个下调),44个与细胞组分相关(38个上调,6个下调)。Pathway结果显示差异基因共影响45条信号通路,其中10条与肿瘤发生发展密切相关。实时定量PCR验证差异基因表达与芯片结果一致。wnt5b、arnt2和bmp2基因在多条肿瘤相关通路中均有显着变化。结论杀草强可能通过多信号通路导致甲状腺肿瘤,其中wnt5b、arnt2和bmp2等基因可能是其主要靶基因。(本文来源于《卫生研究》期刊2016年04期）
潘红梅,韩迪,殷建忠,吴少雄,王琦[6]（2015）在《杀草强对人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响》一文中研究指出【目的】甲状腺是人体最大的内分泌腺,其分泌的甲状腺激素对人体的生长发育和新陈代谢有很重要的作用。甲状腺干扰物对人及动物的甲状腺有很显着的影响,能够干扰甲状腺功能、诱发自身免疫性甲状腺疾病、还有潜在的致甲状腺肿瘤的作用。在已知的甲状腺干扰物中,农药占有很大的比例。杀草强作为一种非选择性除草剂,可通过抑制甲状腺过氧化物酶活性干扰甲状腺激素的合成,动物实验显示杀草强可致啮齿类甲状腺肿瘤,但其机制尚不清楚。本研究以人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞为受试对象,通过差异性表达谱芯片分析,从全基因水平探索杀草强致甲状腺肿瘤可能机制。【方法】实验设空白组对照组,1μg/ml、10μg/ml和100μg/ml杀草强实验组。杀草强处理Nthy-ori-3-1细胞24小时后用MTT法检测其细胞增殖的影响。以不影响细胞增殖的最高剂量杀草强处理Nthy-ori-3-1细胞24小时后,用Agilent4×44k全基因组芯片做基因表达谱分析,并用GO分析和pathway分析芯片结果,应用实时定量PCR技术随机选取五个差异基因验证基因芯片结果。【结果】MTT实验结果显示,杀草强剂量在1~100μg/ml时对Nthy-ori-3-1细胞的形态及增殖无显着影响,表明在此剂量下,杀草强对Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响与细胞毒性无关。基因芯片结果显示,共检测了41001个基因,按p<0.005和FC>2(或FC<2)的标准筛选,共有90个基因的表达发生显着变化,其中55个表达上调,35个表达下调;GO分析显示,这些差异性基因按功能聚类分为生物过程、分子功能和细胞组分3大类,其中与生物过程相关的基因有43个(37个上调,6个下调),与分子功能相关的42个(37个上调,5个下调),与细胞组分相关的44个(38个上调,6个下调)。Pathway结果显示差异基因共影响了45个信号通路,其中大部分与肿瘤发生发展有关。实时定量PCR验证差异基因表达与芯片结果一致,其中agt,call基因显着上调;muc12,raph1和Ppolr1a基因显着下调。agt,wnt5b和ca11基因在甲状腺肿瘤的发生发展中起到很重要的作用;muc12,raph1和polr1a基因影响细胞的内部结构,包括蛋白的合成、修饰和代谢以及细胞骨架系统的装配。【结论】杀草强可能通过多个信号通路导致甲状腺肿瘤的发生,agt,wnt5b,ca11,muc12,raph1和polr1a等基因可能是杀草强导致甲状腺肿瘤发生信号通路的关键基因。(本文来源于《中国毒理学会第七次全国毒理学大会暨第八届湖北科技论坛论文集》期刊2015-10-25）
韩迪[7]（2015）在《杀草强对人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响》一文中研究指出目的甲状腺是人体最大的内分泌腺,其分泌的甲状腺激素对人体的生长发育和新陈代谢有很重要的作用。甲状腺干扰物对人及动物的甲状腺有很显着的影响,能够干扰甲状腺功能、诱发自身免疫性甲状腺疾病、还有潜在的致甲状腺肿瘤的作用。在已知的甲状腺干扰物中,农药占有很大的比例。杀草强作为一种非选择性除草剂,被证实能够干扰甲状腺激素的合成以及导致甲状腺增生和甲状腺肿瘤,但是对其作用机制的研究报道很少。本研究以人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞为受试对象,在排除细胞毒性作用的剂量下,从基因水平探索杀草强致甲状腺肿瘤相关的作用机制。方法实验设计了杀草强0μg/ml、μg/ml.10pg/ml.100μg/ml四个剂量组,用含相应受试物的培养基培养人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞24小时后,经MTT法检测细胞吸光度值,并计算细胞存活率。采用Agilent单标表达谱基因芯片对差异表达基因进行了筛选,并应用实时定量PCR技术随机选择了五个差异基因验证基因芯片结果的可靠性。结果MTT实验结果显示,杀草强剂量在1～100-g/ml时,Nthy-ori-3-1细胞的形态以及增殖同样无显着的变化,表明在此剂量下,杀草强对Nthy-ori-3-1细胞的影响与细胞毒性无关。基因芯片筛选结果显示,有90个基因的表达发生了显着的变化,其中55个基因的表达上调,35个基因表达下调；差异基因共影响了45个信号通路,其中大部分与肿瘤发生发展有关。实时定量PCR技术验证差异基因表达,AGT、CA11基因显着上调；MUC12、RAPH1、POLR1A基因显着下调,与基因芯片结果一致。结论杀草强剂量在1-100μg/ml时,其对Nthy-ori-3-1细胞的影响与细胞毒性无关。AGT、CAll、MUC12基因在甲状腺肿瘤的发生发展中起到很重要的作用；RAPH1、POLR1A基因能够影响细胞的内部结构,包括蛋白质的合成、修饰和代谢以及细胞骨架系统的装配,实时定量PCR验证结果与基因芯片结果一致。(本文来源于《昆明医科大学》期刊2015-05-01）
潘红梅,张立实[8]（2011）在《杀草强影响Fischer大鼠甲状腺滤泡上皮细胞甲状腺球蛋白的机制研究》一文中研究指出目的探讨杀草强影响Fischer大鼠甲状腺滤泡上皮细胞(FRTL-5细胞)甲状腺球蛋白(TG)的机制。方法 1、10和100μg/ml杀草强处理FRTL-5细胞后,用3H掺入法测杀草强的细胞毒性;放免法和免疫细胞化学法测杀草强对TG、甲状腺转录因子1(TTF-1)的影响;免疫荧光法检测杀草强对细胞表面促甲状腺素受体(TSHR)的影响。结果杀草强剂量组与对照组比,细胞毒性和放免法结果显示,1、10和100μg/ml杀草强对FRTL-5细胞DNA合成无显着影响,无显着细胞毒性(P>0.05),对TTF-1也无显着影响(P>0.05),10和100μg/ml杀草强显着降低培养液中TG浓度(P<0.05),免疫细胞化学法显示100μg/ml杀草强显着降低胞浆内TG(P<0.05);免疫荧光法结果显示,1、10和100μg/ml杀草强极显着降低TSHR在细胞膜的表达(P<0.01)。结论杀草强对FRTL-5细胞甲状腺球蛋白的影响可能与其显着降低FRTL-5细胞表面TSHR有关。(本文来源于《卫生研究》期刊2011年04期）
朱莹[9]（2011）在《液相色谱串联质谱法测定蜂蜜中杀草强的含量》一文中研究指出本文首先概述了农药残留的现状,给人类生存环境造成哪些影响,介绍了目前杀草强在水样中的检测技术。详细介绍了样品前处理技术如溶剂萃取技术(SE)固相萃取技术(SPE)的原理及在分析中的应用和有关分析检测技术如气相色谱(GC)、液相色谱(LC)、气质联用(GC-MS),液质联用(LC-MS)等原理和应用。中国是世界产蜜和出口蜂蜜的第一大国。蜂蜜除了大量直接使用外,还是许多产品的原料。蜂蜜中有害物质的检测能力不仅影响着产品的出口,而且影响着国内许多食品相关工业和消费者的安全。蜂蜜中的残留药物同样包括农药,添加剂几大类。农药残留的主要来源是蜜蜂采蜜时接触的植物。本文建立了采用高效液相色谱-串联质谱法(HPLC-MS/MS)检测蜂蜜中杀草强残留量的方法。样品经1%乙酸酸化的25%丙酮水溶液进行提取,然后依次采用二氯甲烷萃取、PCX固相萃取柱净化后,进行HPLC-MS/MS测定,在正离子模式下,多反应监测(MRM)监测,外标法定量。方法的检出限(LOD)为5～50μg/kg,在10mg/L-200mg/L范围内,杀草强的峰面积与其质量浓度有良好的线性关系,对上述5种不同种类的蜂蜜进行添加回收,平均添加回收率大于75%,外标法定量。该方法简单,有效,灵敏,准确。(本文来源于《安徽大学》期刊2011-05-01）
姚秉华,张磊,赵青,庞秀芬,王骋[10]（2010）在《杀草强在纳米SiO_2修饰碳糊电极上的电化学行为及其测定》一文中研究指出制备了纳米SiO2修饰碳糊电极(Nano-SiO2/CPE),通过循环伏安法和示差脉冲伏安法研究了杀草强在Nano-SiO2/CPE上的电化学行为,建立了一种测定杀草强的电化学分析方法。在pH=3.0的0.2mol·L-1H3PO4-NaH2PO4缓冲溶液中,杀草强在Nano-SiO2/CPE上于+0.986V(vs.SCE)处产生一个灵敏的氧化峰。在最佳实验条件下,该氧化峰电流与杀草强浓度在5.0×10-6～1.0×10-3mol.L-1范围呈线性关系,相关系数为0.9993,检出限为2.0×10-7mol.L-1,回收率在92.0%～100.7%之间。实验证实,杀草强在电极上的氧化反应主要是受扩散控制的不可逆反应。(本文来源于《分析科学学报》期刊2010年05期）
杀草强论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
采用柠檬酸钠还原法合成粒径13nm的金纳米粒子,并利用对氨基苯甲酰胺(AMIDE)对其进行表面修饰得到功能化的金纳米粒子(AMIDE-AuNPs)。实验发现,在一定的pH条件下,杀草强能诱导AMIDE-AuNPs聚集,金纳米粒子溶液由酒红色变为蓝色。因此以对氨基苯甲酰胺修饰的金纳米粒子为探针,建立了快速检测杀草强的比色方法。优化后的最佳实验条件为:杀草强与AMIDE-AuNPs反应平衡时间3min,缓冲液pH=4.0。在优化条件下,检测杀草强的线性范围为0.10~0.90mg·L~(-1),检测限(LOD)为0.02mg·L~(-1)。本方法具有简单、快速、灵敏、选择性好等优点,对实际水样中的杀草强进行检测,加标回收率为96.7%~108%,相对标准为1.9%~7.6%。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
杀草强论文参考文献
[1].王月.基于卟啉和量子点的荧光传感器检测氟啶胺和杀草强及其作用机制研究[D].重庆大学.2017
[2].柳英霞,肖石妹,俞勇,郭岚.基于对氨基苯甲酰胺修饰的金纳米粒子比色测定水样中痕量杀草强[J].南昌大学学报(理科版).2017
[3].陈玉锋,赵冰.杀草强分子的拉曼光谱的密度泛函理论研究[J].光谱学与光谱分析.2016
[4].潘红梅,宣群,韩迪,殷建忠,吴少雄.杀草强对人甲状腺Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响[J].环境与健康杂志.2016
[5].潘红梅,宣群,韩迪,殷建忠,吴少雄.杀草强诱导人甲状腺Nthy-ori-3-1细胞肿瘤相关基因表达谱变化[J].卫生研究.2016
[6].潘红梅,韩迪,殷建忠,吴少雄,王琦.杀草强对人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响[C].中国毒理学会第七次全国毒理学大会暨第八届湖北科技论坛论文集.2015
[7].韩迪.杀草强对人甲状腺细胞系Nthy-ori-3-1细胞全基因表达谱的影响[D].昆明医科大学.2015
[8].潘红梅,张立实.杀草强影响Fischer大鼠甲状腺滤泡上皮细胞甲状腺球蛋白的机制研究[J].卫生研究.2011
[9].朱莹.液相色谱串联质谱法测定蜂蜜中杀草强的含量[D].安徽大学.2011
[10].姚秉华,张磊,赵青,庞秀芬,王骋.杀草强在纳米SiO_2修饰碳糊电极上的电化学行为及其测定[J].分析科学学报.2010