导读:本文包含了猪乙型脑炎论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:猪乙型脑炎,症状,流行,诊断
猪乙型脑炎论文文献综述
蔡越,周晓蔓[1]（2019）在《猪乙型脑炎的病状与防控》一文中研究指出猪乙型脑炎是一种常见的人畜共患病,常在夏季流行,给养猪业以及公共安全带来威胁。本文根据兽医临床经验,对此病的病原、病状等进行了细致的分析,并给出了防控措施,以供参考。(本文来源于《今日畜牧兽医》期刊2019年10期）
符旺[2]（2019）在《浅析现代化养猪场猪乙型脑炎的防控措施》一文中研究指出猪乙型脑炎是一种人畜共患病,不仅危害养猪业,影响肉产品国际贸易,而且也严重危害着人类。根据多年的临床实践经验,对乙脑提出合理的防控措施,对乙脑的防控具有一定的参考价值。(本文来源于《畜禽业》期刊2019年10期）
韩伟,周建民,宗树成,杨维维,潘京学[3]（2019）在《猪乙型脑炎疫苗研究进展》一文中研究指出猪乙型脑炎(Japanese encephalitis,JE)是由乙型脑炎病毒(JEV)引起的一种经蚊虫传播的人畜共患病,且是严重威胁人畜健康的一种中枢神经系统的急性传染病。猪是JEV的重要储存宿主和扩增宿主,同时也是乙型脑炎的主要传染源,可引起母猪繁殖障碍和公猪睾丸炎。人是JEV的终末宿主,特别是儿童,感染发病后,死亡率可达25%。目前,仍无有效药物治疗乙型脑炎感染,而其流行区域的扩大及其优势基因型的改变为JEV防控策略带来了新的挑战。近年来,随着基因工程和蛋白质工程的发展,以及对病毒分子结构和功能的深入研究,一些新技术新手段被应用到JEV疫苗研发中,基因工程亚单位疫苗、病毒样颗粒疫苗、嵌合病毒减毒活疫苗、多表位疫苗、DNA疫苗等应运而生。在疫苗制备过程中,培养工艺的优化、病毒抗原的纯化、新型佐剂和耐热保护剂的应用等生产工艺的提升策略,为保障JEV疫苗的质量提供了新方向。文章简述了猪JEV疫苗的使用现状及研发进展,旨在为研制更安全、有效的猪JEV疫苗提供参考依据。(本文来源于《中国畜牧兽医》期刊2019年08期）
韩伟,周建民,郝霖雨[4]（2019）在《猪乙型脑炎病毒转瓶培养工艺的研究》一文中研究指出为了确定猪乙型脑炎病毒转瓶中培养的关键技术参数,对猪乙型脑炎病毒(SA14-14-2株)转瓶培养工艺进行研究,试验以Vero细胞、3 L转瓶培养病毒,通过对接种时间、接毒量、吸附时间、吸附温度、维持液pH值、维持培养温度、培养时间、维持液血清浓度和转瓶机转速9个条件的优化,将繁殖的病毒液冻融一次,采用病毒蚀斑数测定方法测定繁殖病毒效价。结果表明:用3 L转瓶进行培养,将Vero细胞培养至72～96 h进行病毒接种,接种量为1 200万pfu/mL的毒液3 mL,病毒吸附温度为37℃,吸附时间为60 min,吸附后用pH值为7.8、含2%胎牛血清的维持液继续培养,35℃、12 r/h旋转培养至96 h后收获毒液,冻融一次,可获得较高的效价(不低于1×10~7 pfu/mL)。说明上述条件可应用于猪Ⅰ型脑炎病毒的转移培养。(本文来源于《黑龙江畜牧兽医》期刊2019年13期）
吴文婷,喻红艳,郭雨丝,李慧,胡星星[5]（2019）在《2015——2017年我国部分地区猪乙型脑炎血清抗体监测》一文中研究指出为了解我国猪乙型脑炎的免疫效果,采用间接酶联免疫吸附试验(ELISA),对来自全国部分地区529家猪场的10 991份猪血清样品进行乙型脑炎血清抗体检测,并对检测结果进行时间、空间和群间分布分析。结果显示:2015—2017年乙型脑炎平均抗体阳性率分别为89.86%、83.79%和89.89%,总阳性率为88.39%;春季(3月—5月)抗体水平较低,平均阳性率为78.69%,冬季(12月—次年2月)抗体水平最高,平均阳性率为91.24%;西南地区抗体阳性率最低,为80.09%,华东地区最高,为93.57%;经产母猪和公猪抗体水平最高,阳性率分别为95.61%和92.11%,商品猪阳性率最低,为41.38%。结果表明,我国猪群乙型脑炎疫苗免疫水平整体情况较好,但春季、商品猪群以及部分猪场的抗体水平偏低,需要加强监测,及时进行疫苗免疫。(本文来源于《中国动物检疫》期刊2019年01期）
韩伟,周建民,郝霖雨,潘文,潘京学[6]（2018）在《猪乙型脑炎病毒在Vero细胞上的繁殖特性及其灭活疫苗的免疫原性研究》一文中研究指出试验旨在对猪乙型脑炎病毒(JEV,SA14-14-2株)在传代细胞上的繁殖培养特性及其制备的灭活疫苗免疫原性进行研究,确定猪JEV在细胞培养瓶中培养的关键技术参数及其灭活疫苗的免疫原性。以Vero细胞培养病毒,通过接种时间、接毒量、吸附时间、吸附温度、维持液pH、维持培养温度及培养时间7个条件的优化,将繁殖的病毒液冻融一次,采用病毒蚀斑数测定方法测定病毒滴度。按照优化好的条件繁殖一批毒液,经β-丙内酯灭活,与双相佐剂混合,制备成猪乙型脑炎灭活疫苗。两次免疫(间隔14d)接种乙型脑炎抗体阴性仔猪,首次免疫前(0d)、免疫后第7、14、21、28、35、42天采集血清,检测血清中和抗体。二免后第28天进行乙型脑炎P3强毒的攻击,攻毒前(0d)、攻毒后第1、2、3、5、7、9天采集血浆,攻毒后第14天剖杀免疫猪,采集脑组织,检测血浆和脑组织中JEV。结果显示,用细胞培养瓶进行培养,将Vero细胞培养至48h进行病毒接种,接种量为1 000PFU/mL,病毒吸附温度为37℃,吸附时间为90min,吸附后用pH 7.6～8.8维持液继续培养,培养温度为35℃,培养96h后收获毒液,冻融一次,可获得较高滴度的病毒。仔猪免疫制备的灭活疫苗后血清抗体水平迅速升高,血浆和脑组织中均未检测出JEV,免疫组试验猪能抵抗强毒攻击,可获得有效免疫保护。本试验结果为猪乙型脑炎疫苗的生产提供了参考依据。(本文来源于《中国畜牧兽医》期刊2018年12期）
赖月辉,牛晓芸,牛贝贝,朱炜斌,李嘉爱[7]（2018）在《猪乙型脑炎灭活疫苗安全性与免疫效力的研究》一文中研究指出本研究对猪乙型脑炎灭活疫苗(GD株)的安全性和免疫效力进行了评估。用体重为8~10 g SPF鼠进行5批疫苗的安全性比较,结果:5批猪乙型脑炎灭活疫苗(GD株)的安检鼠精神、食欲正常,没有出现不良反应,表明猪乙型脑炎灭活疫苗对SPF鼠是安全的。用30日龄的健康易感仔猪进行疫苗的安全性比较,结果:5批猪乙型脑炎灭活疫苗(GD株)的安检猪体温、精神、食欲正常,没有出现不良反应,安检猪的平均增重与对照猪的平均增重无显着差异,猪的安全性试验结果表明猪乙型脑炎灭活疫苗对猪安全。用体重为8~10 g SPF鼠对猪乙型脑炎灭活疫苗进行免疫保护性试验,SPF鼠注射疫苗后21日,进行猪乙型脑炎病毒(GD株)(病毒含量为106.0TCID50/mL)强毒攻击,结果:攻毒后,5批猪乙型脑炎灭活疫苗(GD株)免疫小鼠的精神、食欲正常,全部健活,免疫组保护率10/10,对照组小鼠全部发病、死亡率10/10。小鼠的免疫攻毒试验结果表明猪乙型脑炎灭活疫苗(GD株)可以刺激机体产生良好的免疫应答,对小鼠的保护率高。(本文来源于《广东畜牧兽医科技》期刊2018年04期）
柴春霞,王侨,赖雅兰,徐伊璇,文心田[8]（2018）在《猪乙型脑炎病毒SCYA201201株感染小鼠后突破血脑屏障能力研究》一文中研究指出将猪乙型脑炎病毒SCYA201201株(F122代次,弱毒株)脑内接种小鼠,评估该病毒株对小鼠的致病性。通过腹腔接种小鼠,分别在接种后6、12、18、24 h观察小鼠脑部病理变化,同时利用荧光定量PCR方法检测其血液、脑组织E基因拷贝数,探究该毒株突破小鼠血脑屏障的能力,从而评估SCYA201201株(F122代次)作为弱毒活疫苗的潜力。结果显示,SCYA201201株(F122代次)高度弱化,对乳鼠的脑内半数致死量(LD_(50))仅为4×10~5PFU·40μL~(-1)。该毒株腹腔接种24 h内,小鼠脑部未出现病理变化,且荧光定量PCR检测为阴性,表明该毒株不能突破小鼠的血脑屏障,具有很高的安全性。(本文来源于《浙江农业学报》期刊2018年06期）
王侨[9]（2018）在《水性佐剂在猪乙型脑炎减毒活疫苗中应用的初步评估》一文中研究指出目前,我国部分养猪场常将灭活疫苗(含水性疫苗佐剂)稀释活疫苗后同时免疫动物,达到降低疫苗免疫次数和提升免疫效果的目的,例如猪圆环灭活疫苗稀释猪繁殖与呼吸综合征活疫苗、猪支原体灭活疫苗稀释猪繁殖与呼吸综合征活疫苗、副猪嗜血杆菌灭活疫苗稀释猪瘟活疫苗。但水性疫苗佐剂能否影响活疫苗的免疫效果以及如何产生影响目前尚不清楚,为此,本论文将水性疫苗佐剂(MONTANIDE?Gel 01 ST,卡波姆、黄芪多糖、左旋咪唑和壳聚糖)和SCYA201201株JEV减毒株作为研究对象开展相关实验,以阐明水性佐剂对活疫苗免疫原性的影响以及影响机理。实验第一部分是筛选商品化水性疫苗佐剂(MONTANIDE?Gel 01 ST)的最适浓度和SCYA201201株JEV减毒株的最佳滴度混合后免疫小鼠,开展免疫指标检测、攻毒保护、不同基因型(基因Ⅰ型和Ⅲ型)间交叉保护、抗体消长规律及环境温度对疫苗免疫效果影响等实验。结果显示,Gel 01 ST佐剂最适浓度为10%,减毒株最佳滴度为10~(7.0)PFU/mL,此时保护率为100%(10/10)。相比于单独免疫减毒株,佐剂的加入可以诱导更高的IgG1/IgG2a抗体(p<0.01)以及中和抗体(p<0.01),并且显着提高淋巴细胞增殖水平(p<0.01)和细胞因子含量,尤其是干扰素伽马(INF-γ)含量(p<0.01)。佐剂也能够增强不同基因型强毒株间的交叉保护率(分别为90%和100%),并且从免疫第5天开始为小鼠提供较高的抗体水平(p<0.01)和保护率(≥80%)。甚至减毒株在室温(25℃)放置部分病毒失活后,与佐剂联用仍然能够提供66.7%以上的保护率,高于单独免疫减毒株组。研究结果表明,Gel 01 ST能够用于JEV活疫苗的免疫,且能通过提高机体的各项免疫指标提升疫苗的免疫效果。实验第二部分是将配制的卡波姆、黄芪多糖、左旋咪唑和壳聚糖佐剂单独或复合后与JEV减毒株混合免疫小鼠,然后开展抗体水平检测和攻毒保护实验,探究配制的水性佐剂对SCYA201201株JEV减毒株免疫效果的影响。实验结果显示,四种佐剂单独使用时,只有4mg/mL浓度的卡波姆对减毒株免疫后的抗体水平有微弱的增强,其余佐剂均无效果;而佐剂混合使用时,抗体水平和攻毒保护率均低于单独免疫减毒株的实验组。研究结果表明,自制的水性佐剂不能增强JEV减毒株的免疫效果反而具有免疫抑制作用,这提示我们活疫苗在临床应用时,需要避免一些药物(或化学复合物)对活疫苗免疫效果产生不利影响。(本文来源于《四川农业大学》期刊2018-06-01）
王侨,柴春霞,冯瑶,曹钰莹,邓李霜[10]（2018）在《猪乙型脑炎病毒基因Ⅰ型弱毒株免疫小鼠后诱导INF-γ的能力》一文中研究指出【目的】评估基因Ⅰ型猪乙型脑炎病毒弱毒株(SCYA201201株)作为候选疫苗诱发机体产生细胞免疫的能力。【方法】将基因Ⅰ型猪乙型脑炎弱毒株(SCYA201201株F122代次)腹腔免疫小鼠后使用ELISA检测试剂盒测定早期的INF-γ水平,之后测定INF-γ在小鼠体内的持续时间。【结果】结果显示:猪乙型脑炎SCYA201201弱毒株(F122代次)经腹腔免疫小鼠后,小鼠血清中的INF-γ在免疫后6 h就可上升到一个较高水平,且INF-γ在血清和小鼠脾脏淋巴细胞中均可持续14 d以上。【结论】猪乙型脑炎SCYA201201弱毒株(F122代次)免疫小鼠后能够在早期诱发INF-γ产生,并且能够维持14 d以上,有作为候选疫苗的潜力。(本文来源于《四川农业大学学报》期刊2018年02期）
猪乙型脑炎论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
猪乙型脑炎是一种人畜共患病,不仅危害养猪业,影响肉产品国际贸易,而且也严重危害着人类。根据多年的临床实践经验,对乙脑提出合理的防控措施,对乙脑的防控具有一定的参考价值。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
猪乙型脑炎论文参考文献
[1].蔡越,周晓蔓.猪乙型脑炎的病状与防控[J].今日畜牧兽医.2019
[2].符旺.浅析现代化养猪场猪乙型脑炎的防控措施[J].畜禽业.2019
[3].韩伟,周建民,宗树成,杨维维,潘京学.猪乙型脑炎疫苗研究进展[J].中国畜牧兽医.2019
[4].韩伟,周建民,郝霖雨.猪乙型脑炎病毒转瓶培养工艺的研究[J].黑龙江畜牧兽医.2019
[5].吴文婷,喻红艳,郭雨丝,李慧,胡星星.2015——2017年我国部分地区猪乙型脑炎血清抗体监测[J].中国动物检疫.2019
[6].韩伟,周建民,郝霖雨,潘文,潘京学.猪乙型脑炎病毒在Vero细胞上的繁殖特性及其灭活疫苗的免疫原性研究[J].中国畜牧兽医.2018
[7].赖月辉,牛晓芸,牛贝贝,朱炜斌,李嘉爱.猪乙型脑炎灭活疫苗安全性与免疫效力的研究[J].广东畜牧兽医科技.2018
[8].柴春霞,王侨,赖雅兰,徐伊璇,文心田.猪乙型脑炎病毒SCYA201201株感染小鼠后突破血脑屏障能力研究[J].浙江农业学报.2018
[9].王侨.水性佐剂在猪乙型脑炎减毒活疫苗中应用的初步评估[D].四川农业大学.2018
[10].王侨,柴春霞,冯瑶,曹钰莹,邓李霜.猪乙型脑炎病毒基因Ⅰ型弱毒株免疫小鼠后诱导INF-γ的能力[J].四川农业大学学报.2018