导读:本文包含了脂肪干细胞论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:脂肪干细胞,细胞分化,应用研究,再生医学
脂肪干细胞论文文献综述
李玉秋,焦玉祥,刘锐,黄飞[1]（2019）在《脂肪干细胞的分离培养、分化及其应用》一文中研究指出脂肪干细胞(adipose-derived stem cells,ADSCs)是从脂肪组织中分离得到的一种具有多向分化潜能的成体干细胞,在不同的诱导因子作用下,可以向脂肪细胞、软骨细胞、肌细胞、血管内皮细胞、神经细胞、表皮细胞及胰岛细胞分化。ADSCs的这些分化潜能,可被应用于美容整形和多种疾病的临床治疗。近年来,随着其研究深度的增加,ADSCs应用的范围也越来越广。本文就ADSCs的分离培养、分化及其应用进展进行综述。(本文来源于《沈阳医学院学报》期刊2019年06期）
张觅,刘洋,谭俊峰,刘立冰,严磊[2]（2019）在《GDF-5在体外诱导脂肪干细胞向软骨细胞转化实验研究》一文中研究指出目的研究体外生长分化因子5(GDF-5)对脂肪干细胞向软骨细胞分化能力的影响。方法选择40只4周龄雌性SD大鼠,体质量约50 g。采用酶消化-密度梯度离心法提取脂肪干细胞,行体外培养,并通过流式细胞术鉴定脂肪干细胞。体外培养的脂肪干细胞分3组,即对照组、矿化组和GDF-5诱导组。不同试剂培养2周后分别进行免疫组织化学、甲苯胺蓝及免疫荧光染色。结果原代细胞经过接种沉降贴壁大量增殖后,按一定方向性排列呈旋涡状或束状,传代后细胞增殖迅速,生长稳定。细胞接种经Ⅱ型胶原免疫组织化学染色:GDF-5诱导组棕黄色阳性表达的细胞数量多;矿化组弱阳性,染色细胞数量少;对照组呈阴性表达。细胞甲苯胺蓝染色示:GDF-5诱导组蓝染阳性,细胞胞浆及其周围有紫红色异常染色;矿化组染色淡,染色细胞少;对照组阴性,细胞几乎均失染。结论 GDF-5能够在体外增强脂肪干细胞的软骨化。(本文来源于《生物医学工程与临床》期刊2019年06期）
郑炜,程天平,李向云,杨帆,郭亚峰[3]（2019）在《同种异体脂肪干细胞介导RhoA-YAP通路在慢性创面修复机制研究》一文中研究指出目的分析同种异体脂肪干细胞(ADSC)移植促进慢性创面修复的效果及Ras同源基因家族成员A(RhoA)-Yes相关蛋白(YAP)信号通路活化的机制。方法选择2个月龄SD大鼠31只,雌雄不限,体质量112～120 g,平均体质量116.7 g。以其中1只提取ADSC并鉴定;30只大鼠随机分为5组:模型组(自身皮瓣移植),ADSC移植组,RhoA抑制剂C3干预组(简称C3干预组),慢病毒转染沉默YAP表达组(简称shYAP组),C3和慢病毒转染联合干预组(简称联合组)。分别在移植后7 d和21 d采用激光多普勒血流计测定创面血流量、皮瓣成活率,逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)和Western blot法检测创面RhoA、YAP、结缔组织生长因子(CTGF)和血管内皮生长因子(VEGF)mRNA和蛋白的定量表达水平。结果体外成功分离并鉴定为ADSC。30只大鼠均成活至实验21 d。ADSC移植组7 d和21 d皮肤血流量[7 d(256.3±56.2) PU,21 d (421.5±82.8) PU]、皮瓣成活率[7 d (32.6±10.6)%,21 d (45.8±17.5)%]、RhoA mRNA(7 d0.36±0.07,21 d 0.58±0.12)、YAP mRNA(7 d 0.33±0.06,21 d 0.52±0.13)、CTGF mRNA(7 d 0.49±0.11,21 d 0.67±0.15)和VEGF mRNA(7 d 0.48±0.14,21 d 0.68±0.16)及蛋白定量表达水平(7 d 0.37±0.07,21 d 0.59±0.12;7 d 0.35±0.06,21 d 0.54±0.13;7 d 0.46±0.11,21 d 0.65±0.15;7 d 0.47±0.14,21 d 0.67±0.16)均显着高于其他各组,联合组显着低于C3干预组和shYAP组,差异有统计学意义(P <0.05)。结论同种异体ADSC可提高慢性创面移植皮瓣的存活率,促进创面愈合,增加创面组织CTGF和VEGF表达,可能通过介导RhoA-YAP信号通路的活化程度来实现。(本文来源于《生物医学工程与临床》期刊2019年06期）
陈杏绮,罗志军,殷安柱,田举,王和庚[4]（2019）在《同种异体脂肪干细胞联合自体富血小板血浆凝胶修复大鼠皮肤软组织创面的临床效果》一文中研究指出目的探讨同种异体脂肪干细胞(ADSCs)联合自体富血小板血浆凝胶对大鼠皮肤软组织创面的修复效果。方法选择40只SD大鼠为研究对象,于大鼠背部行3 cm×3 cm全层皮肤缺损创面,根据治疗方式不同分为A、B、C、D组,每组10只。A组创缘局部注射异体ADSCs悬液联合自体PRP,B组创缘局部注射异体ADSCs悬液,C组创缘局部注射自体PRP,D组采用0.9%氯化钠注射液静脉注射方式。比较4组大鼠创伤面面积、创面愈合时间、微血管计数CD31细胞阳性表达率、Ⅰ型胶原蛋白含量和创面组织的转化生长因子-β_1(TGF-β_1)表达情况。结果 4组大鼠接受治疗前微血管计数CD31细胞阳性表达率、Ⅰ型胶原蛋白含量和创面组织TGF-β_1表达率比较,差异无统计学意义(P>0.05);治疗后不同阶段,A组大鼠创伤面面积明显小于B、C、D组,差异有统计学意义(P<0.05),B、C两组大鼠的创伤面面积比较差异无统计学意义(P>0.05);治疗后,4组大鼠微血管计数CD31细胞阳性表达率均明显上升,A组大鼠微血管计数CD31细胞阳性表达率明显高于B、C、D组,差异有统计学意义(P<0.05);治疗7 d和治疗14 d后,4组的Ⅰ型胶原蛋白含量和创面组织的TGF-β_1表达率比较,差异有统计学意义(P<0.05);A组大鼠创面完全愈合时间明显短于B、C、D组,差异有统计学意义(P<0.05)。结论同种异体ADSCs联合自体PRP治疗大鼠皮肤软组织创伤临床效果显着。(本文来源于《中国药物经济学》期刊2019年10期）
潘盛盛,姜笃银[5]（2019）在《脂肪干细胞在皮肤抗衰老方面的研究进展》一文中研究指出脂肪干细胞具有多向分化能力和丰富的旁分泌功能,且因为其来源广泛、取材方便及组织损伤小等优点已成为细胞治疗和组织工程应用的理想工具。而面部年轻化一直是整形美容领域的热点,其中皮肤抗衰老又是重中之重,脂肪干细胞在皮肤抗衰老方面的作用吸引广大学者研究探讨。本文从离体实验、在体实验及临床应用叁个方面综述脂肪干细胞在皮肤抗衰老方面的研究进展,以确定下一步研究的方向,为临床治疗提供更多可靠的依据。(本文来源于《中国美容医学》期刊2019年11期）
刘向东,宋应亮[6]（2019）在《脂肪干细胞成骨分化机制的研究进展》一文中研究指出提高种植体骨结合,尤其是糖尿病患者的种植体骨结合是口腔种植医生正在面对且亟待解决的难题之一,脂肪干细胞为解决上述问题提供了新的思路,然而脂肪干细胞的成骨分化能力有待提高。本文总结促进脂肪干细胞成骨分化的有效手段以及具体机制,重点综述微小RNA (microRNA,miRNA)以及脑信号蛋白3a (Semaphorin3A,Sema3a)对脂肪干细胞成骨分化的影响及机制,并对未来研究进行展望。(本文来源于《口腔医学研究》期刊2019年10期）
贺龙龙,王淼,李明炜,廖立凡,常晓峰[7]（2019）在《脂肪干细胞膜片在引导骨再生术中的促成骨作用》一文中研究指出目的观察细胞膜片在引导骨再生手术中的促进成骨作用。方法取兔脂肪干细胞,体外扩增,成膜诱导获得细胞膜片。在兔颅骨中制造直径6mm圆形骨缺损。根据骨粉上覆盖的材料分为叁组:胶原膜组、细胞膜片组、胶原膜+细胞膜片组,并设定空白对照组。分别在4周、12周获取标本,使用Micro-CT扫描标本后进行组织学分析。结果 12周时,所有实验组骨缺损基本修复,空白对照组骨缺损无明显修复。Micro-CT结果发现胶原膜+细胞膜片组的新骨生成量多于其他两组。结论在引导骨再生手术中添加细胞膜片可以有效促进骨缺损中的新骨生成。(本文来源于《北京口腔医学》期刊2019年05期）
万言,梁至洁,韦长元[8]（2019）在《脂肪干细胞对乳腺癌生物学特性影响的研究进展》一文中研究指出干细胞辅助移植技术已广泛应用于体表软组织缺陷整形,在乳腺癌术后重建中的应用成为未来的趋势,其中脂肪干细胞(ADSCs)具有良好的增殖、多向分化以及旁分泌等功能,能优化自体脂肪移植疗效,但其在体外对乳腺癌细胞的增殖、上皮间质化以及乳腺癌新生血管形成都有促进作用,在肿瘤学安全性上存在质疑。本文旨在概述ADSCs在乳房重建中的潜在作用,讨论其对乳腺肿瘤学安全性的影响。(本文来源于《肿瘤防治研究》期刊2019年10期）
熊佳超,嵇铂尧,王留军,刘知晓,宋建星[9]（2019）在《脂肪干细胞通过EGFR/ERK通路减轻海水对表皮细胞增殖与迁移能力的抑制作用》一文中研究指出目的通过体外研究探索人脂肪干细胞(hADSC)促进海水浸泡创面愈合的可能机制。方法利用人表皮细胞系HaCaT细胞和人工模拟海水建立海水浸泡创面导致细胞损伤的体外模型。从人脂肪组织分离、培养hADSC并进行鉴定,建立HaCaT细胞与hADSC共培养体系。利用活细胞计数试剂盒(CCK-8)、5-乙炔基-2’-脱氧尿苷(EdU)细胞增殖检测试剂盒与细胞划痕实验等评估HaCaT细胞增殖、迁移能力,并通过蛋白质印迹与实时定量PCR技术检测表皮生长因子受体(EGFR)/细胞外调节蛋白激酶(ERK)信号通路活化情况。结果在添加了10%海水的培养液中,HaCaT细胞的增殖活力已受到明显抑制,与不添加海水培养的细胞相比差异有统计学意义(P<0.05)。利用成功分离的hADSC与HaCaT细胞共培养模型,发现添加10%海水培养的HaCaT细胞增殖与迁移能力均低于不添加海水培养的HaCaT细胞及与hADSC共培养且添加10%海水培养的HaCaT细胞(P均<0.05),而不添加海水培养的HaCaT细胞和与hADSC共培养且添加10%海水培养的HaCaT细胞增殖与迁移能力差异无统计学意义(P>0.05)。添加10%海水培养的HaCaT细胞EGFR/ERK信号通路表达受到抑制,与不添加海水培养的HaCaT细胞及与hADSC共培养且添加10%海水培养的HaCaT细胞相比差异有统计学意义(P<0.05);不添加海水培养的HaCaT细胞和与hADSC共培养且添加10%海水培养的HaCaT细胞EGFR/ERK信号通路表达差异无统计学意义(P>0.05)。结论海水可阻碍EGFR/ERK信号通路的激活、抑制HaCaT细胞的增殖与迁移;hADSC可促进EGFR/ERK信号通路的激活,减轻海水对HaCaT细胞增殖与迁移能力的抑制作用。(本文来源于《第二军医大学学报》期刊2019年10期）
杨馥如,王学智,余四九[10]（2019）在《CRISPR系统促进脂肪干细胞成骨分化与抑制成脂分化的研究》一文中研究指出本研究旨在优化组织培养法分离小鼠脂肪间充质干细胞(adipose-derived stem cells,ASCs),为研究成骨分化和成脂分化在间充质干细胞分化过程中的相互影响奠定基础。通过细胞形态学观察、细胞生长曲线和流式仪器检测所分离获得的间充质干细胞的特性,利用CRISPR-dCas9系统在快速促进间充质干细胞成骨分化的前提下观察其对成脂分化的影响,并通过生化染色、实时荧光定量PCR和免疫细胞学等手段进行分析。结果显示,接种3～5 d后可见细胞从组织块周围爬出,光镜下可见细胞形态多为成纤维细胞样的梭形细胞,且形态单一均匀,具有较高的爬出率,可以大大提高脂肪间充质干细胞的分离效率;通过CRISPR-dCas9系统激活Runx2和Osterix基因后可以促进间充质干细胞的成骨分化,实时荧光定量PCR及油红O染色结果显示,CRISPR-dCas9系统可以同时抑制间充质干细胞的成脂分化;通过CRISPR-dCas9-KRAB系统同时抑制成骨相关基因Runx2和Osterix后可以促进成脂分化。本研究利用组织贴壁法成功获得了高纯度的脂肪间充质干细胞,具有间充质干细胞的特性和分化能力;利用CRISPR系统可以同时过表达Runx2和Osterix两个基因,可以在进成骨分化的同时抑制成脂分化,表明成脂分化和成骨分化的相关性,为基因编辑在间充质干细胞诱导分化和临床应用方面提供了新的思路和方法。(本文来源于《中国畜牧兽医》期刊2019年10期）
脂肪干细胞论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的研究体外生长分化因子5(GDF-5)对脂肪干细胞向软骨细胞分化能力的影响。方法选择40只4周龄雌性SD大鼠,体质量约50 g。采用酶消化-密度梯度离心法提取脂肪干细胞,行体外培养,并通过流式细胞术鉴定脂肪干细胞。体外培养的脂肪干细胞分3组,即对照组、矿化组和GDF-5诱导组。不同试剂培养2周后分别进行免疫组织化学、甲苯胺蓝及免疫荧光染色。结果原代细胞经过接种沉降贴壁大量增殖后,按一定方向性排列呈旋涡状或束状,传代后细胞增殖迅速,生长稳定。细胞接种经Ⅱ型胶原免疫组织化学染色:GDF-5诱导组棕黄色阳性表达的细胞数量多;矿化组弱阳性,染色细胞数量少;对照组呈阴性表达。细胞甲苯胺蓝染色示:GDF-5诱导组蓝染阳性,细胞胞浆及其周围有紫红色异常染色;矿化组染色淡,染色细胞少;对照组阴性,细胞几乎均失染。结论 GDF-5能够在体外增强脂肪干细胞的软骨化。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
脂肪干细胞论文参考文献
[1].李玉秋,焦玉祥,刘锐,黄飞.脂肪干细胞的分离培养、分化及其应用[J].沈阳医学院学报.2019
[2].张觅,刘洋,谭俊峰,刘立冰,严磊.GDF-5在体外诱导脂肪干细胞向软骨细胞转化实验研究[J].生物医学工程与临床.2019
[3].郑炜,程天平,李向云,杨帆,郭亚峰.同种异体脂肪干细胞介导RhoA-YAP通路在慢性创面修复机制研究[J].生物医学工程与临床.2019
[4].陈杏绮,罗志军,殷安柱,田举,王和庚.同种异体脂肪干细胞联合自体富血小板血浆凝胶修复大鼠皮肤软组织创面的临床效果[J].中国药物经济学.2019
[5].潘盛盛,姜笃银.脂肪干细胞在皮肤抗衰老方面的研究进展[J].中国美容医学.2019
[6].刘向东,宋应亮.脂肪干细胞成骨分化机制的研究进展[J].口腔医学研究.2019
[7].贺龙龙,王淼,李明炜,廖立凡,常晓峰.脂肪干细胞膜片在引导骨再生术中的促成骨作用[J].北京口腔医学.2019
[8].万言,梁至洁,韦长元.脂肪干细胞对乳腺癌生物学特性影响的研究进展[J].肿瘤防治研究.2019
[9].熊佳超,嵇铂尧,王留军,刘知晓,宋建星.脂肪干细胞通过EGFR/ERK通路减轻海水对表皮细胞增殖与迁移能力的抑制作用[J].第二军医大学学报.2019
[10].杨馥如,王学智,余四九.CRISPR系统促进脂肪干细胞成骨分化与抑制成脂分化的研究[J].中国畜牧兽医.2019