导读:本文包含了人造血干细胞论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:抗氧化小分子化合物,活性氧自由基,造血干细胞,体外扩增
人造血干细胞论文文献综述
张文姗,范斯斌,宋赫楠,丁亚辉,何媚[1]（2019）在《抗氧化小分子化合物体外扩增人造血干细胞的筛选和验证研究》一文中研究指出目的:基于LKT实验室抗氧化小分子化合物库,筛选人造血干细胞(HSC)体外扩增效果最佳的小分子化合物,并初步验证其对人HSC生物学功能的影响。方法:采用MACS磁珠富集脐带血CD34~+细胞,体外加药培养1周后应用BD Fortessa高通量流式细胞术检测CD34~+细胞及CD34~+CD49f~+细胞的绝对数和比例,以SR1(1μmol/L)为阳性对照,筛选出多个候选化合物。对候选化合物浓度、安全系数、扩增效果等多方面因素进行综合考量后,选出C2968、D3331、B1753、B3358 4个化合物进行后续实验。通过浓度梯度分析初步确定4个化合物的最佳使用浓度,并在此浓度下进行CFC体外短期造血集落形成实验,以验证化合物对人HSC自我更新、多向分化两大生物学功能的影响。结果:应用高通量流式细胞术检测85种抗氧化小分子化合物,筛选得到对人CD34~+细胞及CD34~+CD49f~+细胞具有显着扩增作用的4种化合物C2968、D3331、B1753、B3358。通过体外多浓度梯度稀释培养后,应用流式细胞术检测确定其最佳使用浓度,分别为C2968(0.5μmol/L)、D3331(1.5μmol/L)、B1753(1.5μmol/L)、B3358(15μmol/L)。体外短期造血集落形成实验结果显示,化合物处理组较对照组集落形成数量明显增多,多能祖细胞多向分化潜能得以维持。结论:C2968、D3331、B1753、B3358 4种抗氧化小分子化合物在维持人HSC自我更新的同时能够保证其多向分化潜能,具有较好的体外扩增效果。(本文来源于《中国实验血液学杂志》期刊2019年02期）
杨鑫,周晓红[2]（2018）在《人造血干细胞在不同温度下生长、凋亡的实验研究》一文中研究指出目的通过观察不同温度对人造血干细胞(HSCs)生长及凋亡情况的影响,探讨不同温度对HSCs生长的抑制情况。方法将HSCs在不同温度下培养分为5组:33℃组、35℃组、37℃组、39℃组、41℃组,其中37℃组作为对照组。分别培养4、7、10d,观察红系集落形成单位(CFU-E)集落数;分别培养6、12、24h,观察HSCs细胞凋亡情况。结果培养4d,37℃组CFU-E集落数最高,33℃组和35℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养7d,37℃组CFU-E集落数最高,33℃组、41℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养10d后,37℃组CFU-E集落数最高,33℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05)。培养6h,33℃组HSCs凋亡率最低,33℃组、35℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养12h,33℃组HSCs凋亡率最低,35℃组、39℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养24h,33℃组HSCs凋亡率最低,35℃组、41℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05)。培养6、12、24h,温度变化与流式细胞仪检测HSCs凋亡率均具有相关性(P<0.01)。结论不同温度对HSCs的生长和凋亡有影响。37℃能促进HSCs的生长,温度降低可以抑制HSCs的凋亡。(本文来源于《检验医学与临床》期刊2018年20期）
邓雅文,朱刚,贾书花[3]（2018）在《人造血干细胞的临床应用研究》一文中研究指出造血干细胞(Hemapoietic stem cell,HSC)是生成各种血细胞的原始细胞,又称多能干细胞(multipotential stem cell,MSC)。HSC在人体内有叁个来源,分别为骨髓造血干细胞、外周造血干细胞和脐血造血干细胞。在临床上分为自体造血干细胞、异体造血干细胞两类。HSC具有自我复制、增殖、多向分化及可塑性[1]。高表达CD34和(本文来源于《长治医学院学报》期刊2018年01期）
黄颖,胡军,刘辉,梁晓燕[4]（2016）在《电离辐射对人造血干细胞CD34+的损伤作用》一文中研究指出目的研究不同剂量电离辐射对人造血干细胞CD34+的损害及其机制。方法采集健康人脐带血,分离培养得到CD34+造血干细胞,分为对照组和辐射组。分别用1、2、5 Gy的X线对辐射组细胞进行照射后继续培养24 h后进行对比,检测细胞增殖活性,测定各组内ROS水平并定量测定各组细胞内caspase-3和Nrf-2水平。结果用1、2、5 Gy的电离辐射对CD34+造血干细胞进行照射后,细胞活性降低,ROS释放量增高,细胞内caspase-3、Nrf-2蛋白相对表达量升高,且这种作用与电离辐射剂量相关。结论电离辐射可诱导CD34+造血干细胞损伤,损伤作用很可能与细胞凋亡和氧化应激作用相关。(本文来源于《临床医学研究与实践》期刊2016年12期）
宋赫楠,张宇,丁亚辉,纪庆,杨铭[5]（2016）在《单个人造血干细胞体外培养体系用于小分子化合物筛选》一文中研究指出目的:探索一种高效且稳定验证小分子化合物对人造血干细胞(hHSC)调控作用的体系和方法。方法:用流式细胞术结合目前对h HSC表面标记的研究,优化h HSC分选过程,将干细胞培养精确至单个细胞水平,进而研究小分子化合物对细胞干性的影响。用已发表的对人HSC有扩增作用的小分子化合物SR1及UM171处理单个h HSC,14 d后进行细胞表型流式细胞术检测以及细胞涂片观察形态,同时利用CFC和CAFC验证培养后细胞造血功能的变化。结果:多细胞培养中2种小分子化合物及其组合作用与已知研究相符,并由此获得化合物使用浓度。多参数单细胞分选(CD34+CD38-CD45RA-CD90+CD49f+)及体外培养结果与多细胞培养结果一致,细胞形态分析结果与流式细胞术检测结果一致。此外,CFC和CAFC体外造血功能实验中,处理组细胞集落形成能力显着高于对照组(P<0.05)。结论:建立了一个周期短且扩增作用稳定的单个hHSC体外培养体系和验证小分子化合物作用的方法,为小分子化合物筛选建立了可靠的平台并为以后的h HSC扩增研究打下基础。(本文来源于《中国实验血液学杂志》期刊2016年03期）
张宇[6]（2016）在《p18小分子抑制剂体外扩增人造血干细胞的作用研究》一文中研究指出目的：造血干细胞(Hematopoietic stem cells, HSCs)是最早在临床治疗中进行常规应用的的干细胞类型,其具有自我更新及多向分化潜能。尽管HSCs移植己成熟地应用于治疗各种类型血液系统恶性疾病,但由于传统移植方法中,来源于骨髓或动员后外周血中的HSCs进行移植时需要供体与受体人白细胞抗原(Human leukocyte antigen, HLA)配型全相合,因而导致其在临床应用中仍受到了较大限制。脐带血作为一种新的HSCs来源具有多种临床应用优势,包括其可允许HLA部分错配,同时移植后移植物抗宿主病(GVHD)的发生率大大降低。但由于单份脐带血中HSCs含量较低因而目前仅可满足儿童患者及体重较低的成人患者需要。进入细胞周期是HSCs进行自我更新及扩增的最后一步,而G1期的调控可能是自我更新过程的关键一步。因此,为满足临床治疗需求以及研究HSCs扩增和自我更新的调控机制,我们选择细胞周期调控关键蛋白p18作为靶点,设计筛选出一系列潜在的可使HSCs体外扩增小分子化合物,并进一步对其内在机制进行研究。方法：首先,我们采用慢病毒感染方式敲降人脐带血HSCs中p18的表达,并对敲降后的细胞分别进行干细胞表型分析以及体外造血功能检测。随后,我们以p18作为靶点,根据前期计算机虚拟筛选的结果获得一系列小分子化合物,并利用小鼠HSCs单细胞集落形成实验对这些化合物的造血扩增作用进行了初步分析筛选。当确认该类小分子化合物的造血扩增作用后,我们又用这些小分子化合物处理人脐带血HSCs,进而筛选出一个效果最优的化合物005A。通过HSCs体外培养浓度梯度实验我们确定了化合物005A的最佳作用浓度。我们对化合物005A处理后的细胞进行了HSCs表型分析,随后又对化合物005A处理后的细胞进行了体外短期、长期造血功能实验以及体内免疫缺陷鼠移植实验,以进一步验证化合物005A的造血扩增作用。我们还利用SPR实验以及CDK6酶活性实验检测化合物005A对p18蛋白的抑制作用。此外我们利用单细胞PCR技术对化合物005A引起的细胞内基因变化进行了分析,据此对可能的调控机制进行研究。结果：通过敲降人脐带血HSCs内的p18表达,我们发现流式细胞术检测所得HSCs比例明显增加,同时体外短期造血集落数量也明显升高,体外长期培养中的鹅卵石样原始造血区域频率也显着增加。当利用我们设计出的p18小分子抑制剂化合物对小鼠HSCs进行处理后发现,部分化合物可达到提高小鼠HSCs扩增的作用,其中化合物005A的EDso仅为5.2nM。随后将该系列化合物应用于人脐带血HSCs也发现了类似的作用,且化合物005A仍为效果最优化合物。为进一步优化化合物005A的造血扩增作用,我们采用了浓度梯度实验,从而确定20nM为其扩增人HSCs的最适浓度,其处理后可显着增加HSCs群体(CD34+CD49f+)的比例。化合物005A可达到体外短期造血集落以及体外长期培养中的鹅卵石样原始造血区域频率均显着增加的作用。造血功能检测的金标准——免疫缺陷鼠移植实验结果表明,化合物005A处理后细胞造血能力与未培养前基本相同,且其移植成功率明显升高。对化合物005A与p18蛋白的相互作用实验发现,005A可与p18蛋白结合,并可抑制其活性。单细胞PCR实验结果显示,化合物005A处理后Notch通路相关基因表达显着增加。结论：通过对p18的表达干扰实验发现,p18蛋白在人脐带血HSCs扩增调节中发挥了重要作用。因此我们认为p18是一个HSCs扩增的理想靶点。通过对p18小分子抑制剂体外造血扩增作用的研究发现,其可明显提高HSCs的数量,同时又可维持其造血能力水平。对其作用机制的研究发现,化合物005A主要激活了Notch信号通路的表达,其通路内相关基因表达均有不同程度的上调,进而发挥了促进HSCs扩增的作用。而化合物005A处理后,细胞周期进程并未显着增快,从而避免了发生干细胞耗竭,其对HSCs的扩增作用可能主要是通过增加干细胞对称性自我更新分裂来完成的。以上结果表明,我们发现了一个潜在的促HSCs扩增的小分子化合物,其有望对未来临床HSCs移植治疗发挥作用。(本文来源于《北京协和医学院》期刊2016-05-01）
宋赫楠[7]（2016）在《用于人造血干细胞体外扩增的小分子化合物筛选及作用机制研究》一文中研究指出实验背景：造血干细胞(hematopoietic stem cells, HSCs)是目前研究最为深入的一类干细胞,它具有自我更新及多向分化两大重要特点,能够在保持干细胞池相对稳定的同时增殖分化为复杂造血系统中的各系血细胞。然而,HSCs在骨髓及脐带血中比例极低,基础研究及临床移植中用到的HSCs又多为异质性的细胞群体,即HSCs及定向分化的造血祖细胞混合体,虽然脐带血的应用大大降低了临床用造血干细胞对组织相容性抗原(HLA)的要求,但脐带血仍无法满足成人移植所需的造血干细胞量。基于此,临床移植面临HSCs数目不足及移植用HSCs无统一的质量标准等问题亟待解决。小分子化合物在HSCs调控领域以其浓度可精确调控、结构多样方便优化、易于处理等特点显示出极大优势,已有研究证实,SR1及UM71两种小分子化合物单独使用及组合使用均可显着扩增HSPCs(hematopoietic stem/progenitor cells),其扩增倍数可达到100倍以上。近年兴起的单细胞技术,可有效解决细胞异质性问题,细胞表面标记研究结合先进的流式细胞分选平台,使得纯化获取单个hHSC成为可能。已有研究表明,造血干细胞的表面标记除了经典的CD34、CD38外,CD90、CD45RA以及HSCs特异性标记CD49f,的表面标记组合可将HSCs与造血祖细胞充分区分开来,从而获得单纯的HSCs。体外造血功能实验CFC(colony forming cells)及 CAFC(cobblestone area forming cells)可用于体外验证HSCs功能,其中CFC侧重于观测多能祖细胞的分化能力,CAFC可反映培养系统中具有长期造血重建能力的HSCs。实验目的：本研究主要通过利用对HSCs有明显扩增作用的小分子化合物SR1及UM171,构建多参数单细胞的流式分选及培养体系,通过对分选得到的单个hHSC体外培养后流式检测及形态分析,以及体外造血功能实验,验证本单个hHSC体外培养体系的稳定性和可靠性,以便用于后续调控HSCs功能的小分子化合物筛选。实验方法：首先,我们通过CD34+细胞体外培养确定SR1及UM171的使用浓度,再通过实验摸索得到单细胞培养最适宜的培养基体系,利用BD INFLUX流式分选仪将单个DAPI-CD34+CD38+CD90+CD45RA-CD49f+细胞分选到96孔板中进行14d体外培养,并完成培养后流式分析及细胞形态检测,分析单个hHSC培养体系中小分子化合物的作用。利用经典的体外造血功能实验作一对比,以此验证体系的稳定性。结果：CD34+细胞体外培养确定了化合物使用浓度为SR1(1μmol/L), UM171 (35nmol/L),SR1+UM171(750nmol/L+35nmol/L)。单个hHSC体外培养14天流式结果显示,化合物处理组较对照组相比,有效孔数明显增加,在各孔细胞总数无明显差异的情况下,化合物处理组CD34+细胞及CD34+CD49f细胞绝对数及比例显着增高(P<0.05),几乎所有有效孔细胞均向髓系、淋系两大方向分化,未出现偏系分化,细胞染色结果与流式检测结果一致。CFC结果显示,处理组克隆总数及各种克隆数目较对照组显着增加,且克隆形态及各种克隆比例无差异。CAFC泊松分布结果表明,处理组HSCs频率较对照组明显上升(P<0.05)。结论：此构建的单个hHSC体外培养体系可保证SR1及UM171处理条件下,HSC保持自我更新同时仍具有多向分化潜能,缩短了体外扩增及验证性实验周期,初步解决了HSCs研究面临的异质性问题,为之后筛选靶向HSC的小分子化合物奠定了基础。实验背景：HSCs在早期发育及生命过程中,发挥着维持组织稳态等生理学功能。其自我更新及多向分化两大特性之间的平衡,对于HSCs的功能起着至关重要的作用。近年来对于胚胎干细胞及成体干细胞的研究发现,这一平衡可以由活性氧自由基(reactive oxygen species, ROS)来调节,ROS可以改变细胞内的氧化还原状态,实现代谢的同步性。但是,研究证实,HSCs在低氧环境生存,较低的ROS水平可以帮助维持长期HSCs的生物学功能,提高移植成功率。HSCT不仅需要保证细胞的功能,还需要有用于移植的足够数量的细胞,这也是急需解决的一个问题。人体的抗氧化防御系统是一个复杂的系统,它能够维持较低的ROS水平,同时确保机体内的ROS作为第二信使行使信号传导功能,此系统如不能完成恰当的氧化还原调控,可能会造成ROS水平升高导致氧化应激发生,需要有外界抗氧化物介入调节。实验目的：通过对抗氧化小分子化合物库中的85种小分子化合物进行筛选,得到对HSCs有明显体外扩增作用的几种小分子化合物,并初步验证其对HSCs生物学功能的影响,进而研究其抗氧化作用机制。实验方法：首先由于小分子化合物库中的抗氧化物在HSCs领域未有报道,需要利用CD34+细胞体外扩增的方法,确定化合物的使用浓度,经过初筛以及设计化合物浓度梯度,体外培养后流式分析CD34+细胞及CD34+CD49f+细胞绝对数及比例,得到合适的化合物浓度。通过体外造血功能实验CFC(细胞集落形成实验,colony forming cell assay)验证其对HSCs自我更新及多向分化两大方面的影响。结果：初步筛选85种抗氧化小分子化合物得到对CD34+细胞以及CD34+CD49+细胞均有显着作用(P<0.05)的9种化合物,分别为C2968 (5μM)、B1753 (20μM)、 B3358 (10μM)、C0168 (10μM)、D3331 (5μM)、B8071 (20μM)、B8174(10μM)、 C0263 (20μM)、C2943 (10μM) 。综合化合物浓度及扩增效果两方面因素选取C2968(5μM)、B1753 (20μM)、B3358 (10μM)、C0168 (10μM)、D3331 (5μM)五种小分子化合物进行浓度梯度实验,确定使用浓度。细胞集落形成实验CFC结果显示化合物C2968 (0.5μM)、B1753 (1.5μM)、B3358 (15μM)、D3331(1.5μM)处理组较对照组而言,细胞的集落形成能力显着增强(P<0.05),化合物处理可维持各类血细胞的祖细胞多向分化潜能,特别是多能祖细胞的造血能力。结论：抗氧化小分子化合物C2968 (0.5μM)、B1753 (1.5μM)、B3358(15μM)、 D3331 (1.5μM)具有较好的HSCs体外扩增效果,在维持HSCs自我更新的同时能够保证其多向分化潜能不受影响。C2968 (0.5μM)、B1753 (1.5μM)、B3358 (15μM)、 D3331 (1.5μM)可以作为HSCs体外扩增的新工具,帮助了解HSCs内的抗氧化机制,为基础研究领域HSCs扩增及生理学功能研究,以及HSCs临床移植提供新的方向。(本文来源于《北京协和医学院》期刊2016-05-01）
[8]（2015）在《英国科学家通过干细胞培育人造器官》一文中研究指出2014-04-09凤凰科技据外媒2014年4月8日报道,英国当局已投入近670万美元用于研究在实验室培养人造器官,英国科学家正在进行一项大胆的尝试:在实验室里通过干细胞培育人体器官。目前已有泪腺管、血管、气管等人造器官投入到临床应用中。(本文来源于《《科学与现代化》2015年第1期（总第062期）》期刊2015-03-01）
师鸣,胡林萍,张孝兵,袁卫平,程涛[9]（2015）在《过氧化氢酶对人造血干细胞在免疫缺陷小鼠中植入的作用》一文中研究指出目的:研究人脐带组织来源的间充质干细胞(umbilical cord-derived mesenchymal stem cells,UC-MSC)过表达过氧化氢酶(catalase,CAT)基因对人造血干细胞(hematopoietic stem cells,HSC)移植作用的影响。方法:用携带GFP空载体与GFP-CAT载体的逆转录病毒感染UC-MSC,流式细胞术分选得到MSC-GFP和MSC-GFP-CAT两种细胞株,检测两种细胞株中CAT的mRNA表达水平和过氧化氢酶的酶活力;将其与人脐血CD34+细胞体外共培养;与人Lin-CD34+CD38-CD45RA-CD90+CD49f+Rholow细胞共同移植到NOD/SCID小鼠胫骨中,移植12周后,检测骨髓中的人CD45+细胞比例。结果:感染48 h后能够观察到UC-MSC发出绿色荧光,并能够稳定传代;流式细胞术分选后,MSC-GFP的纯度达到97.6%,MSC-GFP-CAT达到96.8%;MSC-GFP-CAT细胞中CAT的mRNA水平为对照组的23.9倍;体外检测UC-MSC、MSC-GFP和MSC-GFP-CAT细胞的酶活力分别为19.5、20.3、74.1 Unit;在共培养实验中,各组中的CD34+细胞比例无显着差异;在共移植实验中,HSC、MSC-GFP和MSC-GFP-CAT组中人CD45+细胞的比例分别为(3.22±3.1)%、(4.26±3.56)%和(7.37±4.51)%,MSC-GFP-CAT组的植入率为对照组MSC-GFP的1.7倍。结论:MSC-GFP-CAT对人HSC体外扩增无影响;MSC-GFP-CAT与人HSC共移植能够提高人HSC的植入率。(本文来源于《中国实验血液学杂志》期刊2015年01期）
黄颖,梁晓燕,李骋进,胡军,周理乾[10]（2015）在《人参皂苷对不同强度电离辐射损害人造血干细胞的缓解作用》一文中研究指出背景:国内外诸多学者和机构都在研究如何缓解辐射损害,寻找最合适的药物,而人参皂苷作为名贵中药人参的主要药理成分,具有明显的抗氧化作用。目的:探讨人参总皂苷对不同强度电离辐射损害人造血干细胞的缓解作用及其作用机制。方法:采集健康人脐血,分离培养得到CD34+造血干细胞,分为未处理组和人参皂苷预处理组,之后分别用1,2,5 Gy的X射线对细胞照射24 h。MTT检测细胞增殖活性,应用流式细胞仪测定各组内的活性氧水平,AV/PI双染检测各组细胞的凋亡率,最后用Western blot和Real-time PCR对各组细胞内caspase-3和Nrf-2水平进行定量分析。结果与结论:治疗剂量的电离辐射可以诱导CD34+细胞活性下降,同时诱导其发生凋亡,而且细胞内的活性氧活性也呈现进行性升高,这种作用与电离辐射的剂量相关,用人参皂苷进行预处理后,上述作用可得到明显缓解。Western blot和PCR检测结果显示人参皂苷Rb3可以有效抑制由电离辐射引起的caspase-3表达活性增强,另外还可以促进Nrf-2在CD34+细胞内的表达。结果表明人参皂苷可以有效抑制电离辐射诱导CD34+造血干细胞的损伤,这种保护作用很可能与其抗凋亡和抑制氧化应激作用相关。(本文来源于《中国组织工程研究》期刊2015年01期）
人造血干细胞论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的通过观察不同温度对人造血干细胞(HSCs)生长及凋亡情况的影响,探讨不同温度对HSCs生长的抑制情况。方法将HSCs在不同温度下培养分为5组:33℃组、35℃组、37℃组、39℃组、41℃组,其中37℃组作为对照组。分别培养4、7、10d,观察红系集落形成单位(CFU-E)集落数;分别培养6、12、24h,观察HSCs细胞凋亡情况。结果培养4d,37℃组CFU-E集落数最高,33℃组和35℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养7d,37℃组CFU-E集落数最高,33℃组、41℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养10d后,37℃组CFU-E集落数最高,33℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05)。培养6h,33℃组HSCs凋亡率最低,33℃组、35℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养12h,33℃组HSCs凋亡率最低,35℃组、39℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05);培养24h,33℃组HSCs凋亡率最低,35℃组、41℃组与37℃组比较差异有统计学意义(P<0.05)。培养6、12、24h,温度变化与流式细胞仪检测HSCs凋亡率均具有相关性(P<0.01)。结论不同温度对HSCs的生长和凋亡有影响。37℃能促进HSCs的生长,温度降低可以抑制HSCs的凋亡。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
人造血干细胞论文参考文献
[1].张文姗,范斯斌,宋赫楠,丁亚辉,何媚.抗氧化小分子化合物体外扩增人造血干细胞的筛选和验证研究[J].中国实验血液学杂志.2019
[2].杨鑫,周晓红.人造血干细胞在不同温度下生长、凋亡的实验研究[J].检验医学与临床.2018
[3].邓雅文,朱刚,贾书花.人造血干细胞的临床应用研究[J].长治医学院学报.2018
[4].黄颖,胡军,刘辉,梁晓燕.电离辐射对人造血干细胞CD34+的损伤作用[J].临床医学研究与实践.2016
[5].宋赫楠,张宇,丁亚辉,纪庆,杨铭.单个人造血干细胞体外培养体系用于小分子化合物筛选[J].中国实验血液学杂志.2016
[6].张宇.p18小分子抑制剂体外扩增人造血干细胞的作用研究[D].北京协和医学院.2016
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[8]..英国科学家通过干细胞培育人造器官[C].《科学与现代化》2015年第1期（总第062期）.2015
[9].师鸣,胡林萍,张孝兵,袁卫平,程涛.过氧化氢酶对人造血干细胞在免疫缺陷小鼠中植入的作用[J].中国实验血液学杂志.2015
[10].黄颖,梁晓燕,李骋进,胡军,周理乾.人参皂苷对不同强度电离辐射损害人造血干细胞的缓解作用[J].中国组织工程研究.2015