导读:本文包含了二甲酸二甲酯论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:羟胺,过一硫酸盐,邻苯二甲酸二甲酯,高级氧化技术
二甲酸二甲酯论文文献综述
陈舒展,王平,许雯,朱丽婷,何销勤[1]（2019）在《羟胺强化Fe~(2+)/过一硫酸盐体系降解邻苯二甲酸二甲酯的研究》一文中研究指出利用羟胺(HA)强化Fe~(2+)/过一硫酸盐(PMS)体系降解模拟废水中的邻苯二甲酸二甲酯(DMP),研究了HA的强化机制,并考察了不同因素对HA强化Fe~(2+)/PMS体系降解DMP的影响,最后根据中间产物推断DMP的降解途径。结果表明,添加HA使Fe~(2+)/PMS体系中DMP的降解率从7.5%提升至71.9%,酸性环境下DMP的降解率高于碱性环境,Cl-、PO_4~(3-)和腐殖酸对DMP的降解有抑制作用,SO_4~(2-)对DMP降解几乎无影响。在HA摩尔浓度为0～0.500mmol/L时,DMP降解效率与HA摩尔浓度成正比,但HA摩尔浓度高于0.500mmol/L时会在一定程度上抑制DMP降解。自由基清除实验表明,DMP降解的主导自由基为·OH和SO_4~-·。DMP依次降解为邻苯二甲酸单甲酯、邻苯二甲酸、苯甲酸,最后矿化生成CO_2和H_2O,最终矿化率为31.6%。(本文来源于《环境污染与防治》期刊2019年11期）
刘虹,朱晓慧,郭茹鑫,王恒煦,王志刚[2]（2019）在《环境因素对Paracoccus sp.QD15-1降解邻苯二甲酸二甲酯的影响》一文中研究指出邻苯二甲酸二甲酯(DMP)是一种使用面广、年产量大的人工合成有机化合物,扩散到周围环境中会造成环境污染,去除DMP的主要方法为生物降解法,环境因素是影响生物修复的重要因素。以DMP降解菌Paracoccus sp.QD15-1为研究对象,利用紫外分光光度计、高效液相色谱和反转录-聚合酶链式扩增(RT-PCR)技术,研究了在基础无机盐液体培养基中外加碳氮源以及不同pH和温度对菌株生物量、DMP降解率和降解基因表达的影响。结果发现:在不同碳源的生长环境中,加入质量浓度1.0g/L乳糖后,Paracoccus sp.QD15-1的生物量最大,DMP降解率达到42.16%,基因phtAb和phtB的表达量最大;在不同氮源的生长环境中,加入质量浓度1.0g/L硝酸铵后菌株的生物量最大,降解能力最强,基因phtAb和phtB的表达量均最多;在不同pH的生长环境中,pH=8时菌株生物量最多且DMP降解能力最好;在不同温度的生长环境中,当温度为25℃时菌株的生物量最大,DMP降解率为37.80%。pH=8,温度为25℃时,基因phtAb和phtB的表达量均最多。因此,Paracoccus sp.QD15-1在不同环境条件下生长能力和降解DMP能力均较强,能适应不同的生长环境,在DMP污染的生物修复工程实践中具有良好的利用前景。(本文来源于《环境污染与防治》期刊2019年11期）
张永明,汤楹霞[3]（2019）在《加速中间产物的双加氧反应促进邻苯二甲酸二甲酯的生物降解》一文中研究指出邻苯二甲酸二甲酯(DMP)的好氧生物降解是通过两个水解反应开始的,两个水解反应后生成中间产物邻苯二甲酸(PA),随后经过两步双加氧反应得到进一步的生物降解。当PA积累时,DMP的水解会受到抑制,但添加外源电子供体可以促进DMP的生物降解。在本研究中,通过添加丁二酸、乙酸和甲酸作为外源电子供体加速PA的降解效率,以减少PA的积累进而加速DMP的降解速率。当分别添加0.15 mM和0.30 mM的丁二酸作为外源性电子供体时,且初始PA浓度分别为0.3mM和0.6 mM时,PA去除率增加了15%和30%。相同电子当量的乙酸和甲酸对PA的加速效果相同。通过同时添加0.3 mM丁二酸,DMP去除率(PA与DMP同时存在)也提高了37%。(本文来源于《2019中国环境科学学会科学技术年会论文集（第四卷）》期刊2019-08-23）
金珊,王芳[4]（2019）在《间苯二甲酸二甲酯-5-磺酸钠的催化合成研究》一文中研究指出目的探究制备SIPM中磺化、酯化、中和过程中的各种因素对产品得率的影响。方法运用正交设计,以间苯二甲酸(IPA)为原料制备SIPM,将IPA用发烟硫酸磺化,磺化物不经分离,利用剩余废酸及催化剂直接进行酯化,再经中和,精制SIPM。结果得出各因素对产率影响的大小顺序及各因素的数值。结论反应最佳条件为:IPA∶发烟硫酸为1∶1;加二氧化硅时温度为165℃;加硫酸镉时温度为130℃;酯化温度为66℃;IPA∶甲醇为1∶1.1;酯化时间为4 h;磺化时加硫酸镉后的保温时间为40 min;加入硫酸汞后的保温时间为50 min;加入SiO_2后升温至170℃,升温前的保温时间为50 min。(本文来源于《泰山医学院学报》期刊2019年08期）
郭茹鑫,王志刚,王春龙,由义敏,王恒煦[5]（2019）在《邻苯二甲酸二甲酯对荧光假单胞菌的损伤研究》一文中研究指出为探究邻苯二甲酸二甲酯(Dimethyl phthalate,DMP)对细菌的毒理作用,选择荧光假单胞菌(Pseudomonas fluorescens)为受试菌株,采用平板计数试验、对数生长数学模型、细菌表面Zeta电位、荧光偏振法、透射电镜和超高效液相色谱法,测定了P.fluorescens的比生长速率、代时、细胞表面电势、细胞膜流动性、细胞损伤程度和DMP在细胞内外分布,研究DMP对P.fluorescens的细胞毒性。结果表明:经0、10、20、40 mg·L~(-1)的DMP暴露后,细菌比生长速率减小,而代时增加;细菌表面Zeta电位从-12.21±0.56mV逐渐降低为-18.13±0.67 mV,同时DMP增加了细菌细胞膜的流动性,导致细胞明显变形、质壁分离严重并伴有内容物的泄露;在细胞内,DMP累积浓度从0.11±0.10 mg·L~(-1)增加到6.78±0.25 mg·L~(-1);在细胞外,DMP累积浓度从8.44±0.37 mg·L~(-1)增加到30.52±0.88 mg·L~(-1)。研究表明,DMP破坏了P.fluorescens的细胞壁和细胞膜,影响了细菌正常生长。(本文来源于《农业环境科学学报》期刊2019年07期）
王姊威,刘虹,王春龙,吕志航,刘泽平[6]（2019）在《不同碳氮源对Paracoccus sp.QD15-1降解邻苯二甲酸二甲酯的影响》一文中研究指出邻苯二甲酸二甲酯(Dimethyl phthalate, DMP)是一种高毒性的有机污染物,Paracoccus sp.QD15-1能够高效降解DMP,碳氮源是微生物需求量最大的生长要素。本实验以Paracoccus sp.QD15-1为研究对象,在基础无机盐(MSM)培养基中分别外加不同碳氮源(碳源分别为5 g·L~(-1)的葡萄糖、蔗糖、乳糖和淀粉;氮源分别为5 g·L~(-1)的硫酸铵、硝酸钠、硝酸铵和尿素),研究Paracoccus sp.QD15-1生长和降解DMP能力的变化。结果表明,外加4种碳源后,菌株生物量和降解DMP能力均显着提高,其中外加淀粉处理的最大比生长率达到0.13 lg(cfu)·h~(-1),36 h降解率为78.2%,DMP半衰期为15.6 h。外加4种氮源后,降解菌的生物量均有所上升,其中外加尿素,36 h降解率为62.8%。研究表明,Paracoccus sp.QD15-1在不同碳氮源中均能够较好地降解DMP,且外加淀粉作为碳源和外加尿素作为氮源的降解效果更佳,在实际工程应用中具有良好前景。(本文来源于《农业资源与环境学报》期刊2019年04期）
刘树俊,郭学华[7]（2019）在《2,6-萘二甲酸二甲酯合成技术的研究进展与展望》一文中研究指出2,6-萘二甲酸二甲酯(DM-2,6-NDC)是一种重要的中间体,是合成功能聚合物聚萘二甲酸乙二醇酯(PEN)的重要原料,对于其合成技术的研究一直是国内外的研究热点。本文综述了2,6-萘二甲酸(2,6-NDC)的合成方法及2,6-萘二甲酸酯化制备2,6-萘二甲酸二甲酯的研究现状及存在的问题,并对2,6-萘二甲酸二甲酯的发展前景进行了展望。笔者认为,以煤化工副产物煤焦油为原料合成2,6-萘二甲酸二甲酯以及新材料PEN,是国内煤化工企业的一条重要出路。(本文来源于《化工技术与开发》期刊2019年06期）
马荣爽[8]（2019）在《邻苯二甲酸二甲酯对小鼠肝脏的毒性作用》一文中研究指出目的:邻苯二甲酸二甲酯(Dimethyl phthalate,DMP)是增塑剂邻苯二甲酸酯类的一种,广泛存在于水、土壤和大气中,与人们的生活密切相关。目前,国内外对DMP肝脏损伤的研究较少。本研究以小鼠为实验对象,用不同剂量的DMP灌胃C57小鼠20天和40天,观察其对肝脏组织各种功能指标的影响,为探讨DMP对小鼠肝脏的毒性作用机制提供依据。方法:选择80只雌雄各半的健康C57小鼠,根据文献随机将小鼠分成4个剂量组:2.0g/kg DMP组、1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(纯玉米油)。采用连续灌胃的方式进行染毒,灌胃体积为10ml/kg,分别于灌胃20d和40d后眶静脉窦取血后颈椎脱臼处死,取其肝脏组织,测定肝脏组织匀浆中T-SOD、GSH-Px、CAT和MDA氧化损伤指标,NO浓度和NOS酶活力指标,ALT、AST、LDH、Na+-K+-ATP和Ca2+-Mg2+-ATP肝组织代谢酶活力指标,以及肝细胞凋亡情况。结果:1.小鼠体重和肝脏系数灌胃20d和40d后,各组小鼠均未见死亡,进食和活动正常,无异常反应。各剂量组间体重和脏器系数无统计学差异(P>0.05)。2.小鼠肝脏脂质过氧化损伤的测定结果灌胃20天后,雄鼠各DMP染毒组的T-SOD活力均低于对照组(P<0.05);CAT活力1.0g/kg DMP组低于0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组低于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);GSH-Px活力2.0g/kg DMP组低于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);MDA含量各DMP染毒组均高于对照组(P<0.05),1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组MDA含量低于0.5g/kg DMP组(P<0.05)。灌胃20天后,雌鼠各组之间的T-SOD活力无明显变化(P>0.05);各DMP染毒组CAT活力均高于对照组(P<0.05);各组之间的GSH-Px活力无明显变化(P>0.05);2.0g/kg DMP组的MDA含量明显高于其1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05)。灌胃40天后,雄鼠各组之间的T-SOD活力无明显变化(P>0.05);0.5g/kg DMP组和1.0g/kg剂量组CAT活力高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组的CAT活力低于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);1.0g/kg DMP剂量组的GSH-Px活力低于0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP剂量组的GSH-Px活力高于1.0g/kg DMP组(P<0.05);各组之间的的MDA含量无明显差异(P>0.05)。灌胃40天后,雌性小鼠各DMP组的T-SOD活力均低于对照组(P<0.05);2.0g/kg DMP组的T-SOD活力高于0.5g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组;2.0g/kg DMP组的CAT活力和GSH-Px活力均高于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);各DMP染毒组的MDA含量明显高于对照组(P<0.05),1.0g/kg DMP组的MDA含量明显高于0.5g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组(P<0.05)。3.小鼠肝脏NO和NOS的测定结果灌胃20d后,雄性小鼠各DMP染毒组的NO含量明显高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组的NO含量显着高于1.0g/kg DMP组(P<0.05);雄鼠各DMP染毒组的NOS活力明显高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组NOS的活力显着高于0.5g/kg DMP组(P<0.05),2.0g/kg DMP组NOS的活力显着高于1.0g/kg DMP组(P<0.05)。雌性小鼠1.0g/kg DMP组的NO的含量明显低于2.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);0.5g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组NOS的活力明显低于对照组(P<0.05),1.0g/kg DMP组NOS的活力明显低于0.5g/kg DMP组(P<0.05),2.0g/kg DMP组NOS的活力显着高于0.5g/kg DMP组、1.0g/kg DMP组和对照组(P<0.05)。灌胃40d后,雄性小鼠1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组NO的含量明显高于0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);2.0g/kg DMP组的NOS活力显着高于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05)。雌性小鼠各DMP组的NO含量明显低于对照组(P<0.05),1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组的NO的含量低于0.5g/kg DMP组(P<0.05);各DMP组的NOS活力明显低于对照组(P<0.05),1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组的NOS活力低于0.5g/kg DMP组(P<0.05)。4.小鼠肝脏组织酶活力的变化灌胃20d后,雄性小鼠1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组的ALT活力明显低于0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组的AST活力明显低于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组的AST活力低于0.5g/kg DMP组(P<0.05);各组之间LDH活力无明显差异(P>0.05),各DMP染毒组的Ca2+-Mg2+-ATP酶活性均低于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组Ca2+-Mg2+-ATP酶活力明显低于0.5g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组(P<0.05);1.0g/kg DMP组的Na+-K+-ATP酶活力明显低于0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组的Na+-K+-ATP酶活力明显低于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05)。灌胃20d后,雌性小鼠各组之间ALT活力无明显差异(P>0.05);0.5g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组的AST活力明显高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组的AST活力低于0.5g/kg DMP组(P<0.05);各组之间LDH活力无明显差异(P>0.05);0.5g/kg DMP组的Ca2+-Mg2+-ATP酶活力明显高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组的Ca2+-Mg2+-ATP酶活力明显高于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);2.0g/kg DMP组的Na+-K+-ATP酶活力明显高于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05)。灌胃40d后,雄性小鼠2.0g/kg DMP组的ALT活力明显低于1.0g/kg DMP组、0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);0.5g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组的AST活力明显低于对照组(P<0.05),1.0g/kg DMP组的AST活力高于2.0g/kg DMP组和对照组(P<0.05);0.5g/kg DMP组的LDH活力显着高于2.0g/kg DMP组、1.0g/kg DMP组和对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组LDH活力高于1.0g/kg DMP组和对照组(P<0.05);各组肝脏Ca2+-Mg2+-ATP酶活力无明显差异(P>0.05);0.5g/kg DMP组的Na+-K+-ATP酶活力高于对照组和2.0g/kg DMP组(P<0.05)。灌胃40d后,雌性小鼠各组之间ALT活力无明显差异(P>0.05);1.0g/kg DMP组和2.0g/kg DMP组的AST活力明显低于0.5g/kg DMP组和对照组(P<0.05);各组之间的LDH活力无明显差异(P>0.05);各DMP染毒组的Ca2+-Mg2+-ATP酶和Na+-K+-ATP酶活力均低于对照组(P<0.05)。5.肝细胞凋亡情况灌胃20d和40d后,雄性小鼠各DMP染毒组的肝脏组织细胞凋亡率明显高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组肝脏组织细胞凋亡率显着低于0.5g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组(P<0.05),1.0g/kg DMP组肝脏组织细胞凋亡率显着高于0.5g/kg DMP组(P<0.05)。雌性小鼠各DMP染毒组的肝脏组织细胞凋亡率明显高于对照组(P<0.05),2.0g/kg DMP组肝脏组织细胞凋亡率显着高于0.5g/kg DMP组和1.0g/kg DMP组(P<0.05)。结论:1.雄鼠在染毒20d时肝脏组织T-SOD、GSH-Px、CAT酶活力降低,MDA含量增高,染毒40d时GSH-Px、CAT酶活力下降;雌性小鼠在染毒20d时CAT活力和MDA含量升高,在染毒40d时,T-SOD活力下降,GSH-Px、CAT酶活力和MDA含量升高。2.DMP染毒可增加雄性小鼠肝脏组织的NO浓度和NOS活力,雌性小鼠肝脏组织中的NO浓度和NOS活力下降。3.DMP可降低雄性小鼠肝组织ALT、AST、Ca2+-Mg2+-ATP酶活力;Na+-K+-ATP酶活力在染毒20d时降低,40d时增加;在染毒40d时,可使LDH酶活力增高。雌性小鼠在染毒20d时ALT、AST、Ca2+-Mg2+-ATP酶和Na+-K+-ATP酶活力增加,在染毒40d时,AST、Ca2+-Mg2+-ATP酶和Na+-K+-ATP酶活力降低。4.DMP染毒会增加小鼠肝脏细胞的凋亡率。(本文来源于《吉林大学》期刊2019-06-01）
岳美[9]（2019）在《邻苯二甲酸二甲酯对C57小鼠的生殖毒作用》一文中研究指出目的:邻苯二甲酸二甲酯(DMP)在全球范围内被广泛应用,常用于化妆品、香水等护理产品、驱蚊油、清漆和包装袋、塑料薄膜等塑料制品中。在水体、土壤、大气中都能检测到DMP,其经由大气、水、食物等进入生物体中,对机体健康产生威胁。目前,在国内外尚未见DMP对小鼠的生殖毒性作用研究,本实验对C57小鼠连续灌胃DMP,分别在20和40天观察小鼠卵巢、睾丸各项指标的变化,探讨DMP对小鼠生殖毒作用,以期为DMP的毒理检测和预防提供资料,为其安全应用提供依据。方法:选择80只健康C57小鼠,剂量分组为4组,每组20只,雌雄各半,即雌、雄性阴性对照组(玉米油)、低0.5g·kg~(-1)DMP组、中1.0 g·kg~(-1)DMP组、高2.0g·kg~(-1)DMP组,每天灌胃1次。分别于20和40天后,眶静脉窦取血后脱臼处死,观察雄性小鼠血清性激素水平(T、FSH、LH)、睾丸组织标志酶活性(LDH、SDH、G-6-PD)、ATP酶、脂质过氧化损伤(SOD、CAT、GSH-PX、MDA)、精子计数及畸形率、睾丸细胞周期及凋亡率;雌性小鼠血清性激素水平(P、E_2、FSH、LH)、卵巢细胞凋亡率指标的变化情况。结果:1.各组小鼠体重、肛殖距、睾丸脏器系数和卵巢脏器系数的变化雄鼠染毒20天,1.0g·kg~(-1)DMP组睾丸脏器系数明显高于对照组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组睾丸脏器系数明显低于0.5和1.0g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。染毒40天,1.0和2.0g·kg~(-1)DMP组小鼠肛殖距明显低于其他各组(P<0.05)。各染毒组的睾丸脏器系数明显低于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加睾丸脏器系数呈降低趋势。雌鼠染毒20天,各染毒组卵巢脏器系数明显高于对照组(P<0.05);1.0g·kg~(-1)DMP组卵巢脏器系数明显低于0.5 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组卵巢脏器系数明显高于0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。染毒40天,0.5g·kg~(-1)DMP组卵巢脏器系数明显高于对照组(P<0.05);1.0和2.0g·kg~(-1)DMP组卵巢脏器系数明显低于其他各组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组卵巢脏器系数明显低于1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。2.各组小鼠血清中性激素水平变化雄鼠染毒20天,0.5 g·kg~(-1)DMP组T含量明显高于对照组(P<0.05);1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组T含量明显低于0.5 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。2.0 g·kg~(-1)DMP组FSH含量明显高于对照组和1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各染毒组LH含量均低于对照组(P<0.05)。染毒40天,各染毒组T含量均明显低于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加T含量变化呈升高趋势。各染毒组FSH含量均低于对照组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组FSH含量明显高于0.5 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。雌鼠染毒40天,各染毒组小鼠血清中E_2含量明显高于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加E_2含量变化呈降低趋势。2.0 g·kg~(-1)DMP组小鼠FSH含量明显低于其他组(P<0.05)。2.0 g·kg~(-1)DMP组小鼠LH含量明显高于其他组(P<0.05)。3.各组小鼠睾丸组织酶活性变化染毒20天,各染毒组LDH含量均高于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加LDH含量变化呈升高趋势。0.5和2.0 g·kg~(-1)DMP组G-6-PD含量明显低于其他各组(P<0.05)。0.5 g·kg~(-1)DMP组SDH含量明显低于对照组(P<0.05);1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组含量明显高于其他各组(P<0.05)。染毒40天,1.0和2.0g·kg~(-1)DMP组的LDH含量明显低于其他各组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组的LDH含量明显低于1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各染毒组睾丸匀浆中的G-6-PD含量明显高于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加G-6-PD含量变化呈升高趋势。2.0 g·kg~(-1)DMP组SDH含量明显高于对照组和1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。4.各组雄性小鼠睾丸组织中Ca~(2+)-Mg~(2+)-ATPase、Na~+-K~+-ATPase活性变化染毒20天,1.0和2.0g·kg~(-1)DMP组Na~+-K~+-ATPase活性明显低于其他各组(P<0.05);2g·kg~(-1)DMP组Na~+-K~+-ATPase活性明显低于1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各剂量组Ca~(2+)-Mg~(2+)-ATPase活性明显低于对照组(P<0.05);2g·kg~(-1)DMP组Ca~(2+)-Mg~(2+)-ATPase活性明显低于0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。染毒40天,0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组Na~+-K~+-ATPase活性明显低于其他各组(P<0.05)。1.0 g·kg~(-1)DMP组Na~+-K~+-ATPase活性明显低于0.5g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。1.0 g·kg~(-1)DMP组Ca~(2+)-Mg~(2+)-ATPase活性明显高于其他各组(P<0.05)。5.雄性小鼠睾丸组织中脂质过氧化水平变化染毒20天,各染毒组睾丸匀浆中MDA含量明显低于对照组(P<0.05);2.0g·kg~(-1)DMP组含量明显低于0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各染毒组小鼠的GSH-Px含量明显高于对照组(P<0.05)。1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组的SOD含量明显高于其他各组(P<0.05)。0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组的明显高于对照组(P<0.05);1.0 g·kg~(-1)DMP组的CAT含量明显高于0.5 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组的CAT含量明显低于其他组(P<0.05)。染毒40天,0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组MDA含量明显高于对照组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组MDA含量明显低于其他组(P<0.05)。各染毒组小鼠的GSH-Px含量均明显低于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加GSH-Px含量变化呈先降低后升高趋势。6.各组小鼠睾丸细胞凋亡和周期、卵巢细胞凋亡变化雄鼠染毒20天,0.5和1.0 g·kg~(-1)DMP组G0/G1期明显高于对照组(P<0.05)。各染毒组S期明显低于对照组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组S期明显高于0.5g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各染毒组G2/M期明显高于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加G2/M期变化呈降低趋势。各染毒组凋亡率明显高于对照组(P<0.05)。染毒40天,0.5 g·kg~(-1)DMP组G0/G1期明显高于其他各组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组G0/G1期明显低于对照组和1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各染毒组S期明显低于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加S期变化呈升高趋势。1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组G2/M期明显高于其他各组(P<0.05)。各染毒组凋亡率均明显高于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加凋亡率变化呈先升高后降低趋势。雌鼠染毒20天,0.5g·kg~(-1)DMP组卵巢细胞凋亡率明显低于对照组(P<0.05);1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组卵巢细胞凋亡率明显高于其他各组(P<0.05)。染毒40天,0.5g·kg~(-1)DMP组卵巢细胞凋亡率明显低于对照组(P<0.05);1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组卵巢细胞凋亡率明显高于其他各组(P<0.05)。7.各组雄性小鼠精子相对计数和精子畸形率的变化染毒20天,各染毒组相对精子数明显低于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加相对精子数变化呈先升高后降低趋势。1.0和2.0 g·kg~(-1)DMP组精子畸形率明显高于其他各组(P<0.05);随着染毒剂量的增加精子畸形率变化呈升高趋势。染毒40天,0.5 g·kg~(-1)DMP组相对精子数明显高于对照组(P<0.05);1.0和2.0g·kg~(-1)DMP组相对精子数明显低于其他各组(P<0.05);2.0 g·kg~(-1)DMP组相对精子数明显高于1.0 g·kg~(-1)DMP组(P<0.05)。各染毒组精子畸形率明显高于对照组(P<0.05);随着染毒剂量的增加精子畸形率变化呈升高趋势。结论:1.DMP可引起雄性小鼠血清中LH和T含量降低,FSH活性升高;雌性小鼠血清中E_2和LH含量增加,FSH活性下降。2.随着染毒时间延长,DMP可导致小鼠睾丸组织中LDH含量变化呈先增加后减少趋势;G-6-PD含量变化呈先减少后增加趋势;高剂量DMP导致SDH含量增加。3.DMP可降低小鼠睾丸组织中Na~+-K~+-ATPase活性,染毒40天,1 g·kg~(-1)DMP组睾丸组织中Ca~(2+)-Mg~(2+)-ATPase活性升高。4.染毒20天,小鼠睾丸匀浆中MDA含量减少;SOD含量增加;0.5和1.0g·kg~(-1)DMP组CAT含量增加,2.0g·kg~(-1)DMP组CAT含量减少。染毒40天,0.5和1.0g·kg~(-1)DMP组MDA含量增加,2.0g·kg~(-1)DMP组MDA含量减少。随着染毒时间延长,DMP可导致GSH-Px的含量变化呈先增加后减少趋势。5.DMP影响小鼠睾丸细胞周期变化,并可引起睾丸细胞和卵巢细胞凋亡。6.DMP可导致小鼠精子数量减少,并使小鼠精子畸形率增加。(本文来源于《吉林大学》期刊2019-06-01）
朱丽婷,张运浩,陈舒展,许雯,王平[10]（2019）在《K_2FeO_4协同TiO_2光催化降解水中邻苯二甲酸二甲酯》一文中研究指出针对邻苯二甲酸二甲酯(DMP)难降解的特性,采用高铁酸盐-光催化的协同工艺降解水中的DMP;研究了不同参数对DMP降解效能的影响;探讨了光催化降解DMP的机理。结果表明,Fe(Ⅵ)-TiO_2-UV体系对DMP的降解率明显优于其他2种体系(高铁酸盐体系和TiO_2-UV降解体系),说明光催化与高铁酸盐的组合产生明显的协同效应;当DMP初始浓度为5 mg·L~(-1)、pH=9、高铁酸盐和二氧化钛投加浓度分别为31.7 mg·L~(-1)和40mg·L~(-1)时,DMP降解率较高(75%);在Fe(Ⅵ)-TiO_2-UV体系光降解DMP过程中,TiO_2催化剂表面产生的Fe—O—(有机)络合物会抑制DMP降解,用1%HCl溶液洗涤TiO_2,可恢复其活性;用Fe(VI)-TiO_2-UV体系降解实际生产废水和模拟废水中DMP,DMP降解率分别为67%和78.2%。高铁酸盐-光催化联合工艺的协同作用极大地提高了DMP的降解率。(本文来源于《环境工程学报》期刊2019年10期）
二甲酸二甲酯论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
邻苯二甲酸二甲酯(DMP)是一种使用面广、年产量大的人工合成有机化合物,扩散到周围环境中会造成环境污染,去除DMP的主要方法为生物降解法,环境因素是影响生物修复的重要因素。以DMP降解菌Paracoccus sp.QD15-1为研究对象,利用紫外分光光度计、高效液相色谱和反转录-聚合酶链式扩增(RT-PCR)技术,研究了在基础无机盐液体培养基中外加碳氮源以及不同pH和温度对菌株生物量、DMP降解率和降解基因表达的影响。结果发现:在不同碳源的生长环境中,加入质量浓度1.0g/L乳糖后,Paracoccus sp.QD15-1的生物量最大,DMP降解率达到42.16%,基因phtAb和phtB的表达量最大;在不同氮源的生长环境中,加入质量浓度1.0g/L硝酸铵后菌株的生物量最大,降解能力最强,基因phtAb和phtB的表达量均最多;在不同pH的生长环境中,pH=8时菌株生物量最多且DMP降解能力最好;在不同温度的生长环境中,当温度为25℃时菌株的生物量最大,DMP降解率为37.80%。pH=8,温度为25℃时,基因phtAb和phtB的表达量均最多。因此,Paracoccus sp.QD15-1在不同环境条件下生长能力和降解DMP能力均较强,能适应不同的生长环境,在DMP污染的生物修复工程实践中具有良好的利用前景。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
二甲酸二甲酯论文参考文献
[1].陈舒展,王平,许雯,朱丽婷,何销勤.羟胺强化Fe~(2+)/过一硫酸盐体系降解邻苯二甲酸二甲酯的研究[J].环境污染与防治.2019
[2].刘虹,朱晓慧,郭茹鑫,王恒煦,王志刚.环境因素对Paracoccussp.QD15-1降解邻苯二甲酸二甲酯的影响[J].环境污染与防治.2019
[3].张永明,汤楹霞.加速中间产物的双加氧反应促进邻苯二甲酸二甲酯的生物降解[C].2019中国环境科学学会科学技术年会论文集（第四卷）.2019
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