鸡气管黏膜上皮细胞论文-汤智慧,王津津,郭抗抗

鸡气管黏膜上皮细胞论文-汤智慧,王津津,郭抗抗

导读:本文包含了鸡气管黏膜上皮细胞论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献,主要关键词:猪气管黏膜上皮细胞,原代培养,hTERT,转染

鸡气管黏膜上皮细胞论文文献综述

汤智慧,王津津,郭抗抗[1](2019)在《端粒酶基因转染猪气管黏膜上皮细胞增殖特性的研究》一文中研究指出为了研究外源性端粒酶(hTERT)基因导入后对原代培养猪气管黏膜上皮细胞(STECs)增殖活性的影响,试验将外源性hTERT基因转染至原代分离培养的STECs中,以脂质体法用重组质粒pCI-neo-hTERT转染STECs;通过倒置显微镜观察细胞形态,间接免疫荧光法鉴定8型角蛋白的上皮源性;用PCR和Western-blot法检测转染后STECs中hTERT基因的表达情况;用MTT法和流式细胞仪分别检测转染细胞的活力和增殖周期。结果表明:脂质体和质粒体积比会影响转染效率,当二者比例为1∶3时,转染效率最佳;转染细胞经PCR扩增得到大小为461 bp的片段,Western-blot检测得到大小为125 ku的条带;转染后的细胞仍然符合上皮源性细胞的生长特点;细胞活力曲线显示,在接种后的第3~5天细胞增殖速度最快;细胞周期测定显示,转染细胞的细胞核型为2倍体,S期细胞达到48.35%。说明原代培养的STECs转染外源性hTERT基因后,细胞增殖活性增高,并保持了基本的细胞生物学特征,有进一步建立稳定传代细胞系的可能。(本文来源于《黑龙江畜牧兽医》期刊2019年11期)

孙裴,杨榕,顾超逸,张彦明,张琛[2](2014)在《IBV感染鸡气管黏膜上皮基底细胞特性研究》一文中研究指出【目的】研究IBV感染鸡气管黏膜上皮细胞(Chicken trachea epithelium cells,CTECs)中基底细胞的特性,以进一步揭示IBV感染与α-2,3-唾液酸受体之间的关系。【方法】利用光学显微镜观察、电子显微镜技术、RTPCR方法,对接种IBV的细胞进行观察和检测,研究IBV对基底细胞的感染特征。【结果】与CTECs感染IBV结果相反,单独培养的基底细胞接种IBV后,无明显的形态学损伤和亚细胞结构(溶酶体、细胞核)的损伤,细胞中也检测不到IBV的增殖。【结论】气管黏膜上皮细胞可以被IBV感染,单独的基底细胞不能被IBV感染,提示α-2,3-唾液酸受体是否存在与IBV感染具有重要的关系。(本文来源于《西北农林科技大学学报(自然科学版)》期刊2014年04期)

孙裴,杨榕,魏建忠,李郁,王桂军[3](2014)在《鸡气管黏膜上皮基底细胞的分选与鉴定研究》一文中研究指出鸡气管黏膜上皮细胞是IBV和其他禽病原体感染的重要靶细胞。气管黏膜上皮细胞种类多样,不同细胞对病原感染敏感性有差异,研究与比较IBV感染不同种类气管黏膜上皮细胞特性有助于弄清IBV分子感染机制。利用流式细胞仪技术,使用基底细胞特异性抗体从鸡气管黏膜上皮细胞中分选出基底细胞。通过基底细胞培养形态的观察、生长曲线的绘制和特异性免疫荧光的鉴定,成功获得能够稳定生长繁殖的高纯度的鸡气管黏膜基底细胞,为今后IBV或其他相关研究奠定技术基础和提供了良好的种子细胞。(本文来源于《安徽农业大学学报》期刊2014年01期)

韩石[4](2012)在《兔气管黏膜上皮细胞和骨髓间充质干细胞的体外培养与鉴定》一文中研究指出目的:探讨兔气管黏膜上皮细胞和骨髓间充质干细胞的体外培养技术和鉴定方法。一、建立气管黏膜上皮细胞体外培养模型,探讨其体外生长与传代的规律。二、体外构建气管黏膜上皮细胞片。叁、体外分离培养骨髓间充质干细胞,并对其进行鉴定,为进一步研究骨髓间充质干细胞向上皮细胞分化提供实验方法和技术支持。方法:一、体外培养气管黏膜上皮细胞(1)通过组织块法、两步酶消化法获得兔气管黏膜上皮细胞并传代培养。(2)将第3代两种方法培养的上皮细胞及冻存复苏后的上皮细胞分别种植于96孔板内,于6、12、24、36、48、60、72小时取出,用MTT法测定细胞增殖活性。(3)通过HE染色、扫描电子显微镜分别对培养的上皮细胞的形态结构进行观察,通过免疫细胞化学、免疫荧光分别对获得的上皮细胞实施PCK、CK-18检测,进行鉴定。二、体外构建气管黏膜上皮细胞片采用组织块法培养的上皮细胞作为种子细胞,利用温敏培养皿制作上皮细胞片,并通过HE染色、免疫细胞化学、免疫荧光染色、扫描电子显微镜对细胞片进行鉴定。叁、体外分离培养骨髓间充质干细胞通过细胞密度梯度离心法、全血培养法获得骨髓间充质干细胞并传代培养,采用流式细胞术进行骨髓间充质干细胞表面抗原鉴定。结果:一、体外培养气管黏膜上皮细胞(1)通过组织块法、两步酶消化法可以获得兔气管黏膜上皮细胞,组织块法对细胞伤害较小,杂化细胞较多,但可以通过细胞纯化处理获得较高纯度的上皮细胞。机械刮除法等细胞纯化方法有助于上皮细胞的进一步纯化。(2)冻存叁个月的细胞,复苏后存活率、贴壁率较高,但生长增殖速度明显不如未冻存细胞。(3)HE染色可见细胞形态呈梭形、圆形、多角形等,细胞核深染,细胞质呈淡红色。(4) SABC法染色检测细胞中的角蛋白及上皮细胞特异性角蛋白,细胞核呈淡蓝色,细胞质呈棕黄色;而对照组中细胞核呈淡蓝色,细胞质未见棕黄色,结果表明分离培养的细胞为上皮细胞。(5) FITC标记的荧光抗体检测细胞中的角蛋白及上皮细胞特异性角蛋白,可见细胞及细胞核形态,同时细胞质呈亮绿色;而对照组中可见细胞及细胞核形态,但细胞质未见亮绿色,结果表明分离培养的细胞为上皮细胞。(6)扫描电子显微镜检测中明显可见部分细胞有纤毛,表明分离培养的细胞为上皮细胞。二、上皮细胞片的制作(1)采用组织块法培养的上皮细胞作为种子细胞,种植到温敏培养皿上。约10-14天,细胞基本长满皿底。换液后隔天可以收获细胞片。(2)HE染色可见细胞片中细胞密集排列,细胞核深染,细胞质呈淡红色。(3) SABC法染色检测细胞片中的角蛋白及上皮细胞特异性角蛋白,细胞排列紧密,细胞核淡蓝色,细胞质棕黄色,而对照组中细胞密集排列,细胞核深染,细胞质未见棕黄色,结果表明利用纯化后的上皮细胞制作的细胞片为上皮细胞片。(4) FITC标记的荧光抗体检测细胞片中的角蛋白及上皮细胞特异性角蛋白,细胞排列密集,可见细胞及细胞核形态,细胞质呈亮绿色,而对照组中细胞密集排列,细胞及细胞核形态可见,但细胞质未呈亮绿色,结果表明构建的细胞片为上皮细胞片。(5)扫描电子显微镜检测中可见细胞密集排列,部分细胞中可见纤毛,结果表明构建的细胞片为上皮细胞片。叁、骨髓间充质干细胞的培养(1)全血培养法和细胞密度梯度离心法均可以获得骨髓间充质干细胞。细胞呈梭形、圆形、不规则形等。(2)采用流式细胞检测技术,鉴定骨髓间充质干细胞表面抗原,CD29、CD44高表达,不表达CD14、CD34。结论:1、应用组织块法和消化法成功构建了气管黏膜上皮细胞的原代培养模型。2、利用温敏培养皿在体外成功构建了气管黏膜上皮细胞片。3、体外成功分离、培养出兔骨髓间充质干细胞,并进行细胞表面抗原鉴定,为进一步研究人骨髓间充质干细胞及干细胞向上皮细胞诱导分化提供理论基础与技术支持。(本文来源于《扬州大学》期刊2012-05-01)

李海甲[5](2011)在《兔气管黏膜上皮细胞原代培养的研究》一文中研究指出目的:目前,气管外伤、肿瘤切除等均可引起气管缺损,较为理想的治疗方法是行一期端端吻合。但当气管缺损长度超过一定的长度时,则无法进行无张力吻合,必须植入气管代替物才能重建其连续性,维持呼吸道通畅。因此,利用组织工程学的原理和技术在体外构建出具有气管主要生理功能的生物活性人工气管作为移植物修复气管缺损成为研究热点。但是人工气管置换气管后管腔内上皮细胞的再生依赖于从宿主气管邻近部分上皮细胞的迁移,通常造成靠近吻合口区域存在完整的上皮细胞,而管腔内表面的中部没有成熟的上皮细胞覆盖。缺乏发育良好的上皮细胞层常常导致管腔狭窄和肉芽增生,影响假体移植后管腔的开放而导致失败。气管黏膜上皮细胞的培养技术是解决该难题的重要工具之一,本研究拟建立气管黏膜上皮细胞原代培养模型,观察细胞在体外生长及传代的规律,为组织工程气管假体的上皮化提供技术支持。方法:一、分离培养:(1)从4月龄新西兰大耳兔取出气管(甲状软骨至气管分叉),剔除气管周围纤维结缔组织,冲洗气管至苍白并且无黏液为止。(2)剪开气管、撕取黏膜,将黏膜置于含有抗生素的PBS液中浸泡除菌。(3)将黏膜剪成约1m×1mm大小的小块。(4)将黏膜组织小块移入培养瓶中,置入培养箱培养。(5)对培养的细胞采用刮除法结合消化排除法纯化。二、细胞鉴定:对纯化后的细胞通过SABC法免疫组化鉴定、FITC标记的荧光抗体免疫荧光鉴定。叁、传代与冻存:(1)对纯化的细胞进行传代研究,并观察细胞在体外的生长规律。(2)对纯化后的细胞进行冻存与复苏的研究。结果:一、细胞培养:(1)培养约5-6d可见组织块边缘少量上皮样细胞爬出。此后,组织块周围上皮样细胞覆盖面积逐渐增大,细胞呈现叁角形、梭形、圆形、多角形、不规则形等。高倍镜下可见部分细胞顶面伸出纤毛,在培养液中不断摆动。10d后去除组织块,14-15d时,细胞基本长满瓶壁,有纤毛的细胞无增殖。(2)通过刮除法结合消化排除法纯化后的细胞纯度较高。二、细胞鉴定:(1)SABC法染色检测细胞中角蛋白,胞质棕黄色,胞核淡蓝色,结果表明分离培养的细胞为上皮细胞。(2)FITC标记的荧光抗体检测细胞中的角蛋白,胞质亮绿色,可见整个细胞形态,表明分离培养的细胞为上皮细胞。叁、传代与冻存:(1)细胞可以连续传代至第5代,传代后细胞贴壁及生长良好,细胞随着代数的增加细胞体积逐渐变大。传代后未见有纤毛的细胞。第2-4代细胞贴壁及生长时问无明显差异,第5代细胞贴壁数量明显减少,生长缓慢,细胞体积与前几代相比明显变大。(2)本实验复苏冻存3个月的细胞,复苏后细胞存活率、贴壁率较高。经过本方法冻存与复苏的细胞,经过体外培养,细胞活性、增殖能力仍然能够恢复到冻存前水平。结论:本实验应用组织块法成功构建出一种较为经济、便捷、可传代、可重复的兔气管黏膜上皮细胞的原代培养模型。成功对培养细胞进行鉴定、传代与冻存的研究,为气管黏膜上皮细胞培养提供了技术可行性,为组织工程人工气管的上皮化提供理论基础与技术支持。(本文来源于《扬州大学》期刊2011-05-01)

王鸿,矫健,金善哲,张罗[6](2011)在《小鼠鼻腔及气管黏膜上皮细胞的构成和纤毛反应性比较研究》一文中研究指出目的比较小鼠鼻腔及气管黏膜上皮细胞的构成以及纤毛摆动频率对外源性刺激的反应性。方法 采用酶消化法获取小鼠鼻腔及气管黏膜纤毛细胞,观察纤毛细胞的得率以及ATP和苯扎溴铵对纤毛摆动频率的影响;采用免疫组化染色及扫描电镜观察鼻腔及气管黏膜上皮的细胞构成。结果 ①培养细胞中小鼠鼻甲的纤毛细胞得率可达(45±5)%,气管组织仅有(15±5)%;②免疫组化染色鼻腔及气管黏膜上皮细胞均有乙酰化α-tubulin阳性表达,鼻腔的纤毛细胞层更连续,细胞更密集;③100μmol/LATP均能引起鼻甲及气管的纤毛摆动频率增加,增加率分别为235.06%和118.49%;0.005%苯扎溴铵均能使2个部位的纤毛摆动频率下降,降至原有频率的50.31%和8.27%。2组频率比较差异均有统计学意义,P值分别为0.013和0.004;④扫描电镜观察,鼻腔黏膜上皮中纤毛细胞的比例(90%)明显高于气管上皮纤毛细胞比例(30%~40%)。结论 小鼠鼻腔和气管黏膜上皮中纤毛细胞的比例存在明显差异;2个部位的纤毛摆动频率对外源性刺激的反应程度存在明显差异;从纤毛细胞的数量上看,鼻腔远远高于气管,其中鼻甲是个不容忽视的丰富资源。(本文来源于《首都医科大学学报》期刊2011年01期)

孙裴,张彦明,杨小云,唐青海,魏建忠[7](2010)在《鸡胚成纤维细胞与鸡气管黏膜上皮细胞共培养体系的建立》一文中研究指出【目的】建立鸡气管黏膜上皮细胞(Chicken trachea epithelium cells,CTECs)和鸡胚成纤维细胞(Chicken embryo fibroblasts,CEFs)共培养体系,为CTECs体外培养研究与应用奠定基础。【方法】利用细胞套皿培养方法,使CEFs与CTECs体外共培养在一个营养体系中,用含有不同促细胞生长因子(氢化可的松(HC)、转铁蛋白(TF)、人表皮生长因子(HEGF)或牛垂体提取物(BPE))和血清(胎牛血清、鸡血清)的培养液培养,观察各组CTECs的生长情况,绘制生长曲线,记录CTECs体外生长增殖的特点。【结果】与单独培养的CTECs相比,共培养体系中的CTECs体外贴壁、生长增殖能力均显着提高,72h能够铺满整个培养皿,并呈典型的上皮细胞"铺路石"状排列。共培养体系中的CTECs,在缺少3种重要哺乳动物气管黏膜上皮细胞培养所需的促细胞生长因子培养液中,仍能保持较好的生长能力,大大降低了CTECs的培养成本。【结论】成功建立了CTECs与CEFs的共培养体系,为CTECs的体外培养和应用提供了技术支持。(本文来源于《西北农林科技大学学报(自然科学版)》期刊2010年03期)

孙裴,张彦明,魏建忠,李郁,王桂军[8](2010)在《2种气管黏膜上皮细胞体外培养技术的研究》一文中研究指出目的为以猪气管黏膜上皮为细胞模型的研究奠定物质基础,进一步探讨猪气管黏膜上皮细胞的体外传统培养和气液界面培养技术,从而使2种培养技术优势互补。方法对猪气管上皮分离、纯化、培养和传代,并探索上皮细胞最佳冻存复苏条件;复苏后的气管上皮细胞进行气液界面培养,绘制细胞生长曲线和观察细胞纤毛生发情况。利用免疫组化法鉴定上皮细胞。结果4步纯化法可以得到高纯度的气管上皮细胞。使用胎牛血清、DMEM/F12培养液和DMSO的体积分数为50%、40%和10%的冻存体系保存的气管上皮,复苏后细胞存活率平均可达89%。优化后的传统方式培养的上皮细胞可连续传代到第8代,但从第2代开始便观察不到纤毛,转换成气液界面连续培养2代后重新生发纤毛,细胞存活期延长。免疫组化结果显示分离培养细胞为上皮细胞。结论成功建立了2种猪气管上皮细胞培养技术,并找到适宜的气管上皮细胞冻存条件,节省了不断原代取材的成本和时间,并成功实现传统培养细胞冻存复苏后很快适应气液界面的培养并恢复细胞的天然结构,为猪气管黏膜上皮相关研究提供丰富的细胞来源。(本文来源于《中国微生态学杂志》期刊2010年02期)

孙裴[9](2008)在《鸡气管黏膜上皮细胞共培养体系的建立及IBV致细胞病变作用的研究》一文中研究指出气管是病原体入侵机体一个重要入口,气管黏膜上皮细胞(Trachea epithelium cells,TECs)既是许多病原体作用的靶细胞,也是阻挡病原入侵的一个重要屏障。近10年来上皮细胞分离培养研究取得了重大进展,人、哺乳动物及啮齿类动物TECs离体培养已常用来评价细胞的特性和行为,在气液界面培养模型系统中TECs广泛应用于呼吸道疾病发生机制、病原体致TECs病变机理、药物筛选和转运等研究。尚未见到鸡气管黏膜上皮细胞(Chicken trachea epithelium cells, CTECs)分离培养的文献。目前常用的TECs培养条件无法有效地促进CTECs体外培养,因此我们对CTECs体外培养技术进行了探索,旨在建立CTECs体外培养技术为以CTECs为细胞模型的研究提供材料。鸡传染性支气管炎病毒(Infectious bronchitis virus,IBV)不断地发生变异,出现了不同的血清型,而不同血清型之间缺乏交叉保护性,使得利用常规免疫去阻止该疾病的传播变得更加困难,各国学者试图从基因水平上阐明IBV感染、复制和变异的分子机制及病毒组织嗜性、毒力相关分子机理,为该病的防控提供理论基础。IBV在活体中的首发复制位置为CTECs,进行IBV在体外CTECs中的增殖特性研究可以为上述研究提供理论基础。另外,许多IBV地方分离株不适应细胞培养,对IBV在CTECs中培养特性的研究,可为IBV地方流行毒株的分离、鉴定和基础应用研究寻找理想的宿主细胞。为了上述目的,我们进行了CTECs共培养体系的建立和IBV在CTECs中的致病性研究,获得了以下结果:1.利用链酶蛋白酶灌注气管过夜冷消化法和3步纯化法,获得了纯度非常高的原代CTECs。刚分离下来的CTECs为亮球形,多成单个存在,细胞体积较红细胞大,多数细胞纤毛清晰可见,纤毛摆动不止。细胞活性检测可达90%。该法获得的CTECs为进一步的CTECs培养提供了很好的种子细胞。2.为了探索CTECs培养条件,在单独培养CTECs时,还平行分离培养了猪、兔、小鼠TECs。研究结果发现,同样的培养方法和条件,猪、兔、小鼠TECs贴壁率高,能在48h左右完全铺满培养皿底,细胞排列呈现典型的“铺路石”状,甚至猪TECs能够连续传代8代以上。然而,CTECs贴壁率非常低,细胞数量少,呈小片状散在生长,无法铺满培养皿底,细胞存活期较短,更无法传代。通过分析研究结果推测,由于鸡和哺乳动物细胞因子受体同源性很低,而目前TECs培养所用的促细胞贴壁和生长因子主要来自于人或牛等哺乳动物,故对禽源细胞促进生长效果就不明显,CTECs贴壁、增殖受限。3.为了解决CTECs体外培养问题,利用CTECs与鸡胚成纤维细胞(Chick embryo fibroblast,CEF)共培养体系来观察CTECs生长状况,并事先探索了共培养体系培养液的最佳类型。本试验采用PCF插入式Millicell套皿装置,Millicell培养皿中的滤膜上培养CEF,培养皿底部培养CTECs,微孔滤膜的直径(0.4μm)允许两种细胞分泌的因子通过和交换,发挥其对CTECs的生长促进作用。并且CTECs和CEF由滤膜隔开,可对CTECs和CEF单独进行观察和分析。研究结果显示,共培养的CTECs能在72 h以内完全铺满培养皿底,细胞排列呈现典型的“路石”状,细胞数目及细胞活力较单独培养有明显增加。初步表明CTECs与CEF共培养体系的建立,很好地改善了CTECs体外培养状态,可为进一步的CTECs体外研究和应用提供技术保证。4.应用套皿包被有血清气液界面共培养法(人胚胎胶原包被套皿支持膜,膜上以气液界面形式培养CTECs,培养皿底培养CEF,培养液含有低浓度的鸡血清),成功地模拟了体外CTECs的生长条件。与传统单层细胞培养相比,气液界面培养的CTECs呈假复层生长,细胞存活期大大延长,使CTECs结构上尽量接近于天然气管黏膜上皮组织,有利于CTECs体外分化、成熟及功能表达,从而为药物筛选、呼吸道疾病发病机制、病原体与上皮细胞互相作用的研究提供理想的体外细胞培养方法。5.通过给单层生长的CTECs分别接种4株IBV标准毒株、地方分离株,来研究IBV在CTECs中的培养特性。结果显示,4株IBV均不需要在CTECs上传代适应,在首次感染CTECs 72 h以内致CTECs发生病变,以纤毛细胞纤毛脱落、细胞器受损、核仁裂解、细胞膜崩解为特征。IBV在CTECs中培养的细胞毒给鸡胚接种,在鸡胚上连续传1~3代,便可见IBV引起鸡胚发育受阻或鸡胚死亡的特征性变化。对照组Marc145细胞连续盲传到10代未见细胞病变的发生,并且在接毒72h以内检测各组细胞中的病毒浓度,结果显示,接毒CTECs中的病毒浓度明显高于同期的Marc145细胞中的病毒浓度。说明IBV能在CTECs中增殖,并且比在Marc145细胞中病毒增殖的数量多。4株IBV低代次的鸡胚分离株均可在细胞培养物中生长并很快诱导CTECs发生细胞病变,可见CTECs是IBV增殖较为理想的宿主细胞,可为IBV致病机制研究提供良好的细胞模型,为IBV分离、鉴定和血清学检查与基础研究提供技术支持。综上所述,本研究成功地建立了CTECs体外培养技术,尤其是建立了CTECs气液界面共培养体系,使体外培养的鸡气管黏膜上皮在结构和功能上尽量接近黏膜上皮天然结构,可为鸡气管黏膜上皮相关研究提供细胞模型。并且成功地应用到IBV在其中增殖特性和致细胞病变的研究,为IBV体外细胞培养寻找到一个较为理想的宿主细胞。这些研究结果在国内外均属首次报道。(本文来源于《西北农林科技大学》期刊2008-04-01)

唐隽,马玲国,何发尧,张剑利,王跃建[10](2005)在《气管黏膜上皮细胞无血清培养的初步实验研究》一文中研究指出目的:探讨应用无血清培养液培养气管黏膜上皮细胞的可行性。方法:取4只Beagle犬的气管黏膜,在无血清培养基中分别采用酶消化分散法、机械分散法、组织块培养法行气管黏膜上皮细胞的体外培养,于培养后的第10天、第14天和第16天行细胞学观察、扫描电镜观察和纤毛运动频率的测量。结果:酶消化分散法和机械分散法培养的气管黏膜上皮细胞生长缓慢,无纤毛长出。组织块培养法培养的气管黏膜上皮细胞增殖较旺盛,有纤毛生长。纤毛摆动频率最大值为9.33Hz,最小值为3.85Hz,平均(6.8±0.52)Hz。结论:应用无血清培养液可进行气管黏膜纤毛上皮细胞的体外培养。组织块培养法培养的纤毛上皮细胞的分化能力保持较好。(本文来源于《山东大学耳鼻喉眼学报》期刊2005年06期)

鸡气管黏膜上皮细胞论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

【目的】研究IBV感染鸡气管黏膜上皮细胞(Chicken trachea epithelium cells,CTECs)中基底细胞的特性,以进一步揭示IBV感染与α-2,3-唾液酸受体之间的关系。【方法】利用光学显微镜观察、电子显微镜技术、RTPCR方法,对接种IBV的细胞进行观察和检测,研究IBV对基底细胞的感染特征。【结果】与CTECs感染IBV结果相反,单独培养的基底细胞接种IBV后,无明显的形态学损伤和亚细胞结构(溶酶体、细胞核)的损伤,细胞中也检测不到IBV的增殖。【结论】气管黏膜上皮细胞可以被IBV感染,单独的基底细胞不能被IBV感染,提示α-2,3-唾液酸受体是否存在与IBV感染具有重要的关系。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

鸡气管黏膜上皮细胞论文参考文献

[1].汤智慧,王津津,郭抗抗.端粒酶基因转染猪气管黏膜上皮细胞增殖特性的研究[J].黑龙江畜牧兽医.2019

[2].孙裴,杨榕,顾超逸,张彦明,张琛.IBV感染鸡气管黏膜上皮基底细胞特性研究[J].西北农林科技大学学报(自然科学版).2014

[3].孙裴,杨榕,魏建忠,李郁,王桂军.鸡气管黏膜上皮基底细胞的分选与鉴定研究[J].安徽农业大学学报.2014

[4].韩石.兔气管黏膜上皮细胞和骨髓间充质干细胞的体外培养与鉴定[D].扬州大学.2012

[5].李海甲.兔气管黏膜上皮细胞原代培养的研究[D].扬州大学.2011

[6].王鸿,矫健,金善哲,张罗.小鼠鼻腔及气管黏膜上皮细胞的构成和纤毛反应性比较研究[J].首都医科大学学报.2011

[7].孙裴,张彦明,杨小云,唐青海,魏建忠.鸡胚成纤维细胞与鸡气管黏膜上皮细胞共培养体系的建立[J].西北农林科技大学学报(自然科学版).2010

[8].孙裴,张彦明,魏建忠,李郁,王桂军.2种气管黏膜上皮细胞体外培养技术的研究[J].中国微生态学杂志.2010

[9].孙裴.鸡气管黏膜上皮细胞共培养体系的建立及IBV致细胞病变作用的研究[D].西北农林科技大学.2008

[10].唐隽,马玲国,何发尧,张剑利,王跃建.气管黏膜上皮细胞无血清培养的初步实验研究[J].山东大学耳鼻喉眼学报.2005

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