肋软骨细胞论文-殷鹏,袁冬

肋软骨细胞论文-殷鹏,袁冬

导读:本文包含了肋软骨细胞论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献,主要关键词:牙髓细胞,肋软骨细胞,共培养,组织工程软骨

肋软骨细胞论文文献综述

殷鹏,袁冬[1](2016)在《牙髓细胞和肋软骨细胞共培养形成组织工程软骨的胶原类型分析》一文中研究指出目的 :研究牙髓细胞和肋软骨细胞共培养形成的组织工程软骨的胶原类型。方法 :人肋软骨细胞和牙髓细胞按1∶1的比例用微团法共培养来促进其向软骨细胞分化。应用苦味酸天狼猩红染色,偏正光检测法研究形成的组织工程软骨胶原类型,并与颅颌面区域软骨进行比较。结果:肋软骨细胞和牙髓细胞微团法共培养形成的组织工程软骨中以I型胶原为主,同时包括II和III型胶原纤维,其纤维结构组成与肋软骨、髁突软骨增殖层及颞下颌关节盘的纤维结构相似。结论:肋软骨细胞和牙髓细胞共培养可形成的组织工程软骨,其组织结构与纤维软骨相似。(本文来源于《口腔颌面外科杂志》期刊2016年02期)

范忠诚[2](2013)在《同种异体肋软骨细胞修复兔膝关节全层软骨缺损的研究》一文中研究指出目的:探讨同种异体肋软骨细胞复合透明质酸钠对兔膝关节全层软骨缺损的修复作用。方法:手术获取新西兰大白兔肋软骨,分离、培养肋软骨细胞,从细胞形态学、番红0-固绿染色、阿尔辛蓝染色、型胶原免疫细胞化学染色,生长特性方面对肋软骨细胞进行鉴定,从而优选出适合软骨组织工程研究的合适代数。将36只雄性新西兰大白兔制备膝关节全层软骨缺损模型并随机分为空白组,对照组及实验组3组(n=12)。空白组不做特殊处理;对照组关节腔内单纯注入透明质酸钠;实验组关节腔内注入肋软骨细胞/透明质酸钠复合物。各组在术后第1、2、3月分别随机处死4只动物获取股骨远端标本,进行肉眼大体观察、病理组织学检测,并按0'Driseoll, keeley and salter法进行组织学评分。结果:在形态上原代肋软骨细胞与第1代肋软骨细胞无明显差别,第2、3、4代肋软骨细胞形态逐渐变长,梭形细胞数量随细胞代数递增,第5代开始梭形细胞数量明显增多,向成纤维细胞转化。第2代肋软骨细胞阿尔辛蓝染色,番红0-固绿染色及Ⅱ型胶原免疫细胞化学染色均呈强阳性。空白组和对照组全层软骨缺损处主要为纤维组织修复,实验组全层软骨缺损处为软骨组织修复,阿尔辛蓝染色,番红0-固绿染色及Ⅱ型胶原免疫组化染色均呈阳性。0'Driseoll, keeley and salter评分:术后1月:实验组>对照组>空白组,空白组与对照组比较无统计学意义(P>0.05),实验组与空白组,实验组与对照组比较均有统计学意义(P<0.05);术后2月:实验组>对照组>空白组,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05);术后3月:实验组>对照组>空白组,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05)。空白组评分:术后1月>术后2月=术后3月,叁组间两两比较均无统计学意义(P>0.05);对照组评分:术后1月<术后2月<术后3月,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05);实验组评分:术后1月<术后2月<术后3月,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05)。结论:第2代肋软骨细胞适合作为软骨组织工程的种子细胞;肋软骨细胞复合透明质酸钠修复兔膝关节全层软骨缺损近期效果满意。图72幅,表5个,参考文献57篇。(本文来源于《中南大学》期刊2013-05-01)

刘薇,史俊文,岳敏,张婷婷,唐华[3](2013)在《西藏小型猪肋软骨细胞的分离培养及鉴定》一文中研究指出目的分离培养西藏小型猪肋软骨细胞,并对其进行鉴定。方法实验采用3日龄西藏小型猪,二步消化法分离培养西藏小型猪肋软骨细胞(PCCs),同样的方法分离培养小鼠的肋软骨细胞(MCCs),观察两个物种软骨细胞的形态,并分别以西藏小型猪胚胎成纤维细胞(PEFs)和小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)为阴性对照,对所分离培养的软骨细胞进行甲苯胺蓝染色鉴定以及胶原蛋白Ⅱ、蛋白聚糖的免疫荧光鉴定。结果成功分离培养西藏小型猪和小鼠肋软骨细胞,两种细胞的形态有差别,所分离培养的两个物种的软骨细胞均呈甲苯胺蓝染色阳性,胶原蛋白Ⅱ、蛋白聚糖免疫荧光阳性。结论成功建立了西藏小型猪肋软骨细胞分离培养及鉴定的方法。(本文来源于《中国比较医学杂志》期刊2013年03期)

马姝[4](2012)在《肋软骨细胞和牙髓干细胞及FGF9的共培养对组织工程软骨形成和骨化的影响(英)》一文中研究指出牙髓干细胞(DPSCs)来源于颅神经嵴细胞,具有多向分化潜能,是颅面组织再生的重要种子细胞。与关节软骨细胞相比,肋软骨细胞(CCs)容易获取,增殖扩增能力更强。CCs具有软骨形成能力,能够有效地修复关节缺损。本研究采用人的CCs与DPSCs共培养,结果显示CCs能够提供诱导软骨形成的微环境,促进DPSCs向成软骨细胞分化,并提升其软骨形成能力。CCs不能单独阻止软骨向分化的DPSCs矿化,但CCs+FGF9能够同时促进DPSCs的软(本文来源于《口腔生物医学》期刊2012年04期)

刘薇,史俊文,陈佩雯,张婷婷,唐华[5](2012)在《西藏小型猪肋软骨细胞的分离培养及鉴定》一文中研究指出目的分离培养西藏小型猪肋软骨细胞,并对其进行甲苯胺蓝染色鉴定。方法取3日龄西藏小型猪,二步消化法分离培养西藏小型猪肋软骨细胞;对所分离培养的软骨细胞进行甲苯胺蓝染色。结果成功分离培养西藏小型猪肋软骨细胞,甲苯胺蓝染色细胞中有蓝紫色异染颗粒。结论成功建立了西藏小型猪肋软骨细胞分离培养的方法,甲苯胺蓝染色鉴定为阳性。(本文来源于《第十届中国实验动物科学年会论文集》期刊2012-09-25)

刘政呈,郭翔,赵珩[6](2010)在《分离扩增肋软骨细胞在叁维支架上的种植与培养》一文中研究指出背景:外科长段气管切除后,需要应用气管替代物,理想的替代材料需具有相当的强度、可弯曲性以及内面覆盖的上皮。合适的种子细胞、性质优良的载体、良好的生长媒介是组织工程化气管构建中最重要的组成部分。目的:寻找分离培养肋软骨细胞的最佳方法,构建软骨-支架模型。方法:将取出的兔第5,6肋软骨切成组织片,经胰酶、蛋白酶消化或酶处理后贴壁,分离肋软骨细胞并扩增。传代2次后种植于聚乳酸羟基乙酸或涤纶支架上,继续载体外环境下培养。观察单层培养扩增中软骨细胞的形态、结构,及在支架上培养时的细胞生长状态、外分泌基质。结果与结论:酶消化法和组织块培养法所获细胞均为原代肋软骨细胞,单次传代时间为5d,但组织块培养法分离细胞较慢,且存在成纤维细胞污染情况,提示酶消化法适合用于肋软骨细胞的分离。肋软骨细胞种植于支架后贴附良好,第2周时可见基质分泌,获得软骨-支架模型,可用于构建组织工程化气管。(本文来源于《中国组织工程研究与临床康复》期刊2010年34期)

袁亚江,梅晰凡,高蔚然,张赫[7](2009)在《SD大鼠肋软骨细胞的原代培养和去分化现象的观察》一文中研究指出目的建立大鼠肋软骨细胞(RCC)分离、培养的方法,探讨其传代过程中细胞外基质及其形态的变化。方法采用胰酶和Ⅱ型胶原酶两步消化法结合机械吹打获得分散的单个RCC,观察单层培养的不同代数RCC的细胞形态变化;采用免疫细胞化学方法检测不同代数RCC蛋白多糖和Ⅱ型胶原的表达。结果大鼠肋软骨经两步消化后,可获得高纯度的软骨细胞,经免疫组化及甲苯胺蓝染色呈阳性结果,同时观察到RCC在传代过程中细胞发生了去分化现象。结论软骨细胞可以通过传代培养获得扩增,但仅限于四代以内细胞。(本文来源于《辽宁医学院学报》期刊2009年05期)

王丽,王正辉,杨壮群,李丽霞,屠军波[8](2008)在《不同浓度的IL-1β和TGF-β_1对大鼠肋软骨细胞的影响》一文中研究指出目的:研究人白细胞介素-1β(IL-1β)和转化生长因子-β1(TGF-β1)对体外培养的SD大鼠肋软骨细胞功能的影响。方法:采用免疫组织化学检测不同剂量IL-1β和TGF-β1作用48h后软骨细胞Ⅱ型胶原和蛋白多糖表达水平。采用RT-PCR方法检测细胞Ⅱ型胶原、aggrecanase-1,2、aggrecan的mRNA的表达水平。结果:IL-1β可以促进软骨细胞aggrecanase-1,2的表达,从而降低多聚蛋白聚糖的含量,破环细胞外基质结构,减少Ⅱ型胶原的含量,使细胞呈现去分化的表现,对软骨细胞起负性调节作用。低浓度的TGF-β1对软骨细胞起保护的作用;高浓度的TGF-β(1100ng/ml)在促进蛋白多糖表达的同时也促进软骨细胞蛋白多糖的降解,从而打破软骨的代谢平衡,起负性调节的作用。(本文来源于《中国美容医学》期刊2008年08期)

王正辉,李国光,杨壮群,贺西京,王丽[9](2007)在《大鼠肋软骨细胞体外培养及老化对基质代谢的影响》一文中研究指出目的建立大鼠肋软骨细胞(RCC)分离、培养的方法,探讨其老化过程中细胞外基质及其相关基因的变化,为软骨细胞增殖分化的调控和软骨组织工程修复的研究建立实验基础。方法显微解剖出大鼠软骨,酶消化法获得分散的单个RCC。观察单层培养的不同代数RCC的细胞形态变化;采用免疫细胞化学方法检测不同代数RCC蛋白多糖和Ⅱ型胶原的表达;RT-PCR从mRNA水平分析Ⅱ型胶原、蛋白聚糖及蛋白聚糖酶-1、2(Aggrecanse-1,2)基因表达量。结果本实验分离的RCC呈多角形或圆形,第4代细胞形态发生变化;第1代到第3代细胞蛋白聚糖逐渐减少,第4代明显下降;Ⅱ型胶原(Collagen)含量随着细胞的老化逐渐减少;Aggrecanse-1前3代无明显变化,第4代明显上升,而Aggrecanse-2则无明显改变。结论本研究所建立的分离培养方法可以获得高纯度、高活性的软骨细胞,前3代RCC保持了在体软骨细胞的表型,是研究软骨细胞生物活性的良好材料。(本文来源于《组织工程与重建外科杂志》期刊2007年06期)

刘芳芳,房居高,韩德民[10](2007)在《兔肋软骨细胞的高效分离及体外培养》一文中研究指出目的:研究兔原代肋软骨细胞的高效分离及体外培养快速增殖方法。方法:取2月龄新西兰大白兔肋软骨,以培养液配制的0.1%Ⅱ型胶原酶分离兔肋软骨细胞,检测细胞收获效率和存活率。体外培养并传代,观察细胞形态、生长及胞外基质中胶原的变化。结果:①肋软骨经Ⅱ型胶原酶消化软骨基质逐步解离和降解,细胞被完全分离,细胞存活率平均为97.1%;②原代、第1代和第2代细胞贴壁生长呈叁角形或多角形,生长融合时呈卵圆形,麦松叁色反应呈阳性,第3代细胞逐渐变为梭形;③传代细胞在75cm2培养瓶中培养的增殖量大约是在25cm2瓶中增殖量的2.96倍。结论:①Ⅱ型胶原酶能完全消化降解肋软骨基质,使细胞完全分离,并具有高细胞收获率和高细胞存活率;②原代、第1代和第2代肋软骨细胞具有良好的生物学活性;③传代细胞在75cm2培养瓶中培养,可以减少传代次数而收获所需数目的细胞。(本文来源于《青海医药杂志》期刊2007年11期)

肋软骨细胞论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

目的:探讨同种异体肋软骨细胞复合透明质酸钠对兔膝关节全层软骨缺损的修复作用。方法:手术获取新西兰大白兔肋软骨,分离、培养肋软骨细胞,从细胞形态学、番红0-固绿染色、阿尔辛蓝染色、型胶原免疫细胞化学染色,生长特性方面对肋软骨细胞进行鉴定,从而优选出适合软骨组织工程研究的合适代数。将36只雄性新西兰大白兔制备膝关节全层软骨缺损模型并随机分为空白组,对照组及实验组3组(n=12)。空白组不做特殊处理;对照组关节腔内单纯注入透明质酸钠;实验组关节腔内注入肋软骨细胞/透明质酸钠复合物。各组在术后第1、2、3月分别随机处死4只动物获取股骨远端标本,进行肉眼大体观察、病理组织学检测,并按0'Driseoll, keeley and salter法进行组织学评分。结果:在形态上原代肋软骨细胞与第1代肋软骨细胞无明显差别,第2、3、4代肋软骨细胞形态逐渐变长,梭形细胞数量随细胞代数递增,第5代开始梭形细胞数量明显增多,向成纤维细胞转化。第2代肋软骨细胞阿尔辛蓝染色,番红0-固绿染色及Ⅱ型胶原免疫细胞化学染色均呈强阳性。空白组和对照组全层软骨缺损处主要为纤维组织修复,实验组全层软骨缺损处为软骨组织修复,阿尔辛蓝染色,番红0-固绿染色及Ⅱ型胶原免疫组化染色均呈阳性。0'Driseoll, keeley and salter评分:术后1月:实验组>对照组>空白组,空白组与对照组比较无统计学意义(P>0.05),实验组与空白组,实验组与对照组比较均有统计学意义(P<0.05);术后2月:实验组>对照组>空白组,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05);术后3月:实验组>对照组>空白组,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05)。空白组评分:术后1月>术后2月=术后3月,叁组间两两比较均无统计学意义(P>0.05);对照组评分:术后1月<术后2月<术后3月,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05);实验组评分:术后1月<术后2月<术后3月,叁组间两两比较均有统计学意义(P<0.05)。结论:第2代肋软骨细胞适合作为软骨组织工程的种子细胞;肋软骨细胞复合透明质酸钠修复兔膝关节全层软骨缺损近期效果满意。图72幅,表5个,参考文献57篇。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

肋软骨细胞论文参考文献

[1].殷鹏,袁冬.牙髓细胞和肋软骨细胞共培养形成组织工程软骨的胶原类型分析[J].口腔颌面外科杂志.2016

[2].范忠诚.同种异体肋软骨细胞修复兔膝关节全层软骨缺损的研究[D].中南大学.2013

[3].刘薇,史俊文,岳敏,张婷婷,唐华.西藏小型猪肋软骨细胞的分离培养及鉴定[J].中国比较医学杂志.2013

[4].马姝.肋软骨细胞和牙髓干细胞及FGF9的共培养对组织工程软骨形成和骨化的影响(英)[J].口腔生物医学.2012

[5].刘薇,史俊文,陈佩雯,张婷婷,唐华.西藏小型猪肋软骨细胞的分离培养及鉴定[C].第十届中国实验动物科学年会论文集.2012

[6].刘政呈,郭翔,赵珩.分离扩增肋软骨细胞在叁维支架上的种植与培养[J].中国组织工程研究与临床康复.2010

[7].袁亚江,梅晰凡,高蔚然,张赫.SD大鼠肋软骨细胞的原代培养和去分化现象的观察[J].辽宁医学院学报.2009

[8].王丽,王正辉,杨壮群,李丽霞,屠军波.不同浓度的IL-1β和TGF-β_1对大鼠肋软骨细胞的影响[J].中国美容医学.2008

[9].王正辉,李国光,杨壮群,贺西京,王丽.大鼠肋软骨细胞体外培养及老化对基质代谢的影响[J].组织工程与重建外科杂志.2007

[10].刘芳芳,房居高,韩德民.兔肋软骨细胞的高效分离及体外培养[J].青海医药杂志.2007

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