质粒表达载体论文-孙越鹏,朱晓西,苏杏丽,范芳,李长福

质粒表达载体论文-孙越鹏,朱晓西,苏杏丽,范芳,李长福

导读:本文包含了质粒表达载体论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献,主要关键词:肝癌细胞,表达质粒,转染

质粒表达载体论文文献综述

孙越鹏,朱晓西,苏杏丽,范芳,李长福[1](2019)在《质粒表达载体转染HepG2.2.15和BEL-7402细胞的效率分析》一文中研究指出目的:探讨pEGFP-N1质粒表达载体转染HepG2.2.15和BEL-7402两种肝癌细胞的效率。方法:提取、纯化pEGFP-N1质粒,采用脂质体将纯化的pEGFP-N1质粒转染HepG2.2.15和BEL-7402两种肝癌细胞。显微镜下观察细胞形态,分析转染效率。结果:HepG2.2.15细胞呈梭形或不规则叁角形,可成层生长,有许多颗粒样物质和空泡。BEL-7402肝癌细胞呈梭形,相互拥挤呈现"铺路石"状。pEGFP-N1质粒转染HepG2.2.15细胞的转染率为27%,转染BEL-7402细胞的转染率为89%。结论:pEGFP-N1质粒转染BEL-7402细胞效率高于HepG2.2.15细胞。(本文来源于《华夏医学》期刊2019年02期)

安韶雅,虎娟,张虹,孙放,马霞[2](2018)在《用于植物基因表达载体构建的质粒改造及其应用》一文中研究指出为克服目前常用于植物基因表达载体构建的质粒所具有的酶切位点有限,目的基因片段难于插入和连接,缺少植物基因表达所必须的启动子、终止子、筛选标记等功能元件的缺点,本研究构建了一个用于植物基因表达载体构建的质粒载体pNULPGE200。该质粒载体引入了植物基因表达最常用的CaMV 35S启动子(cauliflower mosaic virus 35S promoter)和NOS终止子(nopaline synthase terminator),以及之间的多克隆酶切位点MCS(multiple cloning site)。利用pNULPGE200构建植物基因表达载体,经PCR等方法克隆得到的目的基因可以直接连接到35S启动子与NOS终止子之间,使目的基因能够在植物体内稳定表达;同时该质粒载体还具有独立表达的卡那霉素NPT Ⅱ(neomycin phosphotransferase Ⅱ)耐性基因和sGFP(synthetic green-fluorescent protein with S65T mutation)绿色荧光蛋白报告基因,可用于基因转化时的筛选。本研究以假单胞菌(Pseudomonas putida)携带质粒的二甲苯单加氧酶(xylene monooxygenase)编码基因为材料,分别利用本文质粒载体和常规的质粒载体pBI121构建了植物表达载体,验证了文中质粒载体的实用性。(本文来源于《生命科学研究》期刊2018年02期)

陈任,张虹,张芮,虎娟,周涛[3](2018)在《用于植物多基因表达载体构建的质粒系统》一文中研究指出为克服目前常用于植物基因表达载体构建的质粒由于酶切位点有限,目的基因片段难于插入,缺少植物基因表达所必须的启动子、终止子和筛选标记等功能元件,无法构建多个基因表达载体等缺点,本研究通过对大肠杆菌(Escherichia coli)质粒p UC18和双核农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)Ti(tumer inducing)质粒p BI121进行改造,建立了一套适用于植物基因表达载体构建的质粒系统,即重组质粒p KAFCR80和p KAFCR100。p KAFCR80具有植物基因表达最常用的CAMV 35S启动子(cauliflower mosaic virus 35S promoter)和NOS终止子(Nopaline synthase terminator),并在其上游、中间和下游引入了多个克隆酶切位点,利用PCR等方法克隆得到的目的基因片段可以多种方式连接到35S启动子与NOS终止子之间;p KAFCR100具有卡那霉素NPTⅡ(neomycin phosphotransferaseⅡ)耐性基因和s GFP(synthetic green-fluorescent protein with S65T mutation)绿色荧光蛋白报告基因,以及其中间的多克隆酶切位点。p KAFCR80与p KAFCR100两个质粒的配合使用,可以方便地构建植物单个或多个基因表达载体。本研究以PCR扩增的甜叶菊葡萄糖基转移酶叁个基因为材料,利用该质粒系统以单独和组合形式成功地构建了植物表达载体,验证了该系统的实用性。(本文来源于《分子植物育种》期刊2018年04期)

马旸,韩陈陈,李亦凡,汪扬,魏伟[4](2016)在《pIRES-EGFP-GRK2-S670A突变质粒真核表达载体的构建与表达》一文中研究指出GRK2-S670A突变体导入pI RES-EGFP真核表达载体,为寻找GRK2磷酸化GPCR的位点提供研究基础。利用PCR定点突变试剂盒,获得pG EM-T-GRK2-S670A,用Sal I/Apa I分别对pG EM-T-GRK2-S670A和EGFP-C3双酶切,构建EGFP-C3-GRK2-S670A,Sal I/BamH I双酶切EGFP-C3-GRK2-S670A和pI RES-EGFP,得到pI RES-EGFP-GRK2-S670A。将构建的质粒转染HEK293细胞,荧光显微镜下观察和Western blot法检测融合蛋白的表达。酶切鉴定显示pI RES-EGFP-GRK2-S670A质粒条带大小符合,测序结果正确,成功构建pI RES-EGFP-GRK2-S670A真核表达质粒,转染HEK293细胞后可见融合蛋白表达,为后续研究奠定基础。(本文来源于《安徽医科大学学报》期刊2016年10期)

李旭奎,姚佳,饶国洲[5](2016)在《BimS真核质粒过表达载体构建及诱导ACC-2细胞凋亡作用》一文中研究指出目的构建BimS真核质粒过表达载体及鉴定并转染ACC-2细胞,观察其在细胞中上调BimS蛋白表达及促凋亡作用。方法根据人BimS基因设计引物,扩增目的基因片段,挑选阳性克隆,分别采用PCR扩增电泳和DNA测序鉴定。分为对照组和实验组将构建的质粒表达载体转染ACC-2细胞,通过定量PCR和Western biot检测其基因和蛋白相对表达水平,检测细胞凋亡率和超微结构的变化。结果实验组细胞凋亡明显,凋亡率为(29.6±0.3)%;对照组细胞凋亡率仅为(0.83±0.2)%,实验组与对照组细胞凋亡率比较具有统计学差异(P<0.05)。电镜下实验组细胞呈典型的细胞凋亡形态学改变,对照组细胞形态未发生变化。结论 BimS真核质粒过表达载体构建成功,并能显着上调ACC-2细胞中BimS mRNA、蛋白表达及诱导细胞凋亡。(本文来源于《北京口腔医学》期刊2016年02期)

韩白玉,崔瀚之,燕翔,黄鹏,黄华龙[6](2015)在《人Bcl-6 3'UTR区报告质粒及其表达载体的构建和功能检测》一文中研究指出目的通过构建bcl-6基因野生型、突变体3'UTR区及其编码序列(CDS),观察miR-127对bcl-6的直接靶向调控作用及bcl-6表达载体回复miR-127抑制细胞周期和细胞生长的功能。方法利用PCR方法扩增bcl-6基因3'UTR区序列及其CDS,分别构建在pc DNA3.0-Luc和pc DNA3.0-Flag载体上,在bcl-6基因3'UTR质粒基础上应用重组PCR方法构建miR-127结合位点突变的突变体报告基因质粒,应用荧光素酶报告基因系统检测miR-127对bcl-6的直接靶向调控作用,在肝癌细胞Hep G2中检测过表达及敲低miR-127引起bcl-6基因表达抑制后细胞周期和细胞生长的改变,同时应用表达载体回复bcl-6蛋白水平,检测bcl-6在miR-127调控细胞周期和细胞生长中的必要性。结果构建的重组质粒经酶切鉴定和测序证实构建正确,bcl-6 3'UTR野生型和突变体报告质粒与miR-127共转293T细胞和Hep G2细胞后荧光素酶报告基因检测显示miR-127明显降低野生型报告质粒的活性,但对突变体活性没有影响,miR-127可引起Hep G2细胞G2/M期阻滞并抑制细胞生长,bcl-6可以逆转miR-127对细胞周期和细胞生长的影响。结论成功构建bcl-6基因3'UTR区野生型、突变体报告质粒和bcl-6基因的表达载体,荧光素酶报告基因和回复实验证实均具有生物学功能。(本文来源于《南方医科大学学报》期刊2015年10期)

吴艳凤,李德涛,郑倩,李雪,薛成军[7](2015)在《DNMT3a基因shRNA质粒表达载体的构建及其沉默作用》一文中研究指出目的以DNMT3a mRNA保守序列为靶基因设计针对DNMT3a mRNA的siRNA序列和无效干扰对照序列(HK),并利用基因重组技术将其克隆到真核表达载体p Gensil-1中,构建p Genesil-1-DNMT3a-shRNA、p Genesil-1-HK-shRNA重组质粒。方法应用转化技术将重组质粒转化到大肠杆菌DH5a中,通过卡那霉素抗性筛选出阳性菌落后提取质粒进行酶切和测序鉴定,应用质粒转染技术转染耐顺铂肺腺癌A549细胞(A549-DDP),利用RT-PCR技术检测转染重组质粒24、48、72 h后DNMT3a的沉默效率。结果测序结果与合成序列一致,重组质粒不能够被PstⅠ切开,转染p Genesil-1-DNMT3a-shRNA能够明显抑制DNMT3a的表达,抑制率分别达到25.5%,56.2%,63.4%,且呈明显时间依赖性,而p Genesil-1-HKshRNA无明显抑制作用。结论成功构建了DNMT3a基因shRNA及HK质粒真核表达载体,为进一步实验研究奠定了基础。(本文来源于《中国老年学杂志》期刊2015年06期)

温志红,代艳,何爽[8](2015)在《人MicroRNA-335阳性对照质粒真核表达载体的构建及意义》一文中研究指出目的构建人MicroRNA-335(has-miR-335)阳性对照质粒表达载体。方法根据与has-miR-335"种子区"完全匹配的序列设计并合成一对互补的寡聚核苷酸链,经过缓慢降温退火得到目的小片段。将退火产物连接入荧光素酶报告基因载体p MIR-REPORT而得到has-miR-335阳性对照重组质粒。应用Lipofectamine 2000将has-miR-335阳性对照重组质粒、p MIR-REPORT空载体,分别与Pre-miRTMmicroRNA335 Precursor共转染至293T7/17细胞,用双荧光素酶方法检测has-miR-335在真核细胞中表达水平。结果获得has-miR-335阳性对照重组质粒,经测序结果正确。has-miR-335与其阳性对照结合在真核细胞中的表达下降。结论成功构建了has-miR-335阳性对照质粒表达载体。该载体可用于确认has-miR-335实验中RNA提取、转染和基因表达检测方法是否可靠。has-miR-335双荧光素酶报告基因检测体系的建立为进一步进行has-miR-335靶基因检测及验证奠定基础。(本文来源于《中国临床新医学》期刊2015年01期)

刘嵘,李一荣,胡丽华[9](2014)在《pEGFP-C2-hTim-3真核表达载体的构建和hTim-3质粒稳定转染16HBE细胞株的建立》一文中研究指出目的筛选表达Tim-3的人呼吸道相关细胞株,为进一步阐明Tim-3可能与人呼吸道疾病相关奠定基础;构建pEGFP-C2-hTim-3真核表达载体,以期用于hTim-3的功能研究。将测序正确的重组质粒pEGFP-C2-hTim-3转染入人支气管上皮细胞株16HBE中,筛选出阳性细胞克隆,为后续实验提供理论基础。方法用含10%胎牛血清的高糖DMEM培养基于37℃5%CO2饱和湿度培养箱中体外培养人呼吸道相关细胞株16HBE、A549和GLC-82,调整细胞到最佳状态,对数生长期时收集细胞,抽提总RNA,逆转录为cDNA。参照人GenBank中Tim-3基因的全长序列,使用Primer5.0设计并合成其引物,采用PCR检测以上3种细胞Tim-3的mRNA。将健康人外周血Tim-3基因全长cDNA片段克隆入真核表达载体pEGFP-C2,经菌落PCR、双酶切及测序鉴定,构建包含目的基因Tim-3的重组质粒pEGFPC2-hTim-3。利用脂质体介导pEGFP-C2-hTim-3质粒和pEGFP-C2质粒分别转染16HBE细胞,荧光显微镜下观察16HBE细胞的瞬时转染效率,并采用含G418的培养基筛选以获得整合pEGFP-C2-hTim-3和pEGFP-C2的阳性细胞克隆,用荧光显微镜观察pEGFP-C2-hTim-3和pEGFP-C2在16HBE细胞上的定位表达。结果 1)PCR显示人呼吸道相关细胞株16HBE、A549和GLC-82均表达Tim-3 mRNA;2)构建了具有筛选特征和能够稳定表达的pEGFP-C2-hTim-3质粒载体,测序结果与预期设计完全一致;3)瞬时转染后经荧光显微镜检查可见表达pEGFP-C2-hTim-3绿色荧光蛋白的16HBE细胞不足8%,表达pEGFP-C2绿色荧光蛋白的16HBE细胞不足15%。采用G418筛选后获得表达野生型hTim-3和外源性pEGFP-C2-hTim-3的16HBE细胞及转染pEGFP-C2空质粒的16HBE细胞,经荧光显微镜观察前者定位在胞膜上,后者定位于胞质中。结论人呼吸道相关细胞株16HBE、A549和GLC-82均表达Tim-3mRNA,Tim-3可能与人类呼吸道疾病的发生和发展相关。成功构建了真核表达载体pEGFP-C2-hTim-3并获得了高表达pEGFP-C2-hTim-3的16HBE阳性克隆细胞,可供后续研究使用。(本文来源于《中国病原生物学杂志》期刊2014年10期)

王明菊[10](2014)在《miR-134真核质粒表达载体和慢病毒载体的构建及其初步验证》一文中研究指出背景与目的:抑郁症是一类常见病,临床上主要表现为患者对日常活动和娱乐的兴趣减退、对前途悲观失望、容易焦虑、睡眠质量较差等,迄今,人们对抑郁症的发病原因以及发病机制还不是很清楚,但是可以肯定的是,其发病有生物、心理以及社会环境等内外因素的参与。近年来,有研究提示miRNAs与精神疾病有关联,其可能在精神疾病的发生、发展中起着十分重要的角色。有研究发现miR-134的表达水平在BD躁狂相病人的血液中降低,然而miR-134的表达水平在癫痫持续状态(status epilepticus,SE)造模成功的大鼠模型中上升,并且在内侧颞叶癫痫(Mesial Temporal LobeEpilepsy,MTLE)病人中也同样检测到miR-134表达水平的升高。目前的研究主要是证实了miR-134异常表达与精神疾病有关,但是对精神疾病中miR-134的精细调控机制的研究还十分有限。如果想要更加深入地了解miR-134发挥的作用,我们需要建立细胞或动物模型,在细胞及动物水平检测其引起的病理生理改变。本课题的目的在于构建miR-134真核质粒表达载体和慢病毒载体,并且将构建好的质粒和慢病毒转染至OL(oligodendroglia,人类少突胶质瘤)细胞、SD大鼠海马神经元中,为研究抑郁症的分子机制提供有效的实验工具。方法:1.用PCR的方法从OL细胞基因组中扩增含有miR-134基因的目的片段,并将miR-134基因的PCR产物和载体pEGFP-N1连接以构建pEGFP-miR-134载体,经酶切、测序证实之后采用Invitrogen公司的Lipofectamine LTX和Plus Reagents转染试剂盒将质粒瞬时转染至OL细胞中,提取总RNA,在基因水平检测miR-134在OL细胞中的表达变化。2.取出生24h内的清洁级SD乳鼠,断头后分离提取海马神经元,采用无血清培养基培养神经元,为后期在海马神经元中进行的细胞活力实验、细胞凋亡实验及突触可塑性实验奠定良好基础。3.构建Lenti-miR134-EX慢病毒表达载体,并包装、纯化慢病毒,经鉴定慢病毒包装成功后将其感染SD大鼠海马神经元,提取总RNA,在基因水平检测miR-134在海马神经元中的表达变化。结果:1.从OL细胞基因组中成功扩增出含有miR-134基因的目的片段,并将其连接到载体pEGFP-N1,命名为pEGFP-miR-134,且转染OL细胞效果较好。2.用简单的方法即可分离培养出高纯度(可达90%以上)的海马神经元。3.成功包装了能够表达绿色荧光蛋白的慢病毒载体,命名为Lenti-miR134-EX。结论:本课题成功构建了miR-134真核质粒表达载体和慢病毒载体,并获得瞬时转染的OL细胞以及SD大鼠原代海马神经元,为深入研究miR-134在抑郁症的精细调控机制提供了有效的工具和平台。(本文来源于《重庆医科大学》期刊2014-05-01)

质粒表达载体论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

为克服目前常用于植物基因表达载体构建的质粒所具有的酶切位点有限,目的基因片段难于插入和连接,缺少植物基因表达所必须的启动子、终止子、筛选标记等功能元件的缺点,本研究构建了一个用于植物基因表达载体构建的质粒载体pNULPGE200。该质粒载体引入了植物基因表达最常用的CaMV 35S启动子(cauliflower mosaic virus 35S promoter)和NOS终止子(nopaline synthase terminator),以及之间的多克隆酶切位点MCS(multiple cloning site)。利用pNULPGE200构建植物基因表达载体,经PCR等方法克隆得到的目的基因可以直接连接到35S启动子与NOS终止子之间,使目的基因能够在植物体内稳定表达;同时该质粒载体还具有独立表达的卡那霉素NPT Ⅱ(neomycin phosphotransferase Ⅱ)耐性基因和sGFP(synthetic green-fluorescent protein with S65T mutation)绿色荧光蛋白报告基因,可用于基因转化时的筛选。本研究以假单胞菌(Pseudomonas putida)携带质粒的二甲苯单加氧酶(xylene monooxygenase)编码基因为材料,分别利用本文质粒载体和常规的质粒载体pBI121构建了植物表达载体,验证了文中质粒载体的实用性。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

质粒表达载体论文参考文献

[1].孙越鹏,朱晓西,苏杏丽,范芳,李长福.质粒表达载体转染HepG2.2.15和BEL-7402细胞的效率分析[J].华夏医学.2019

[2].安韶雅,虎娟,张虹,孙放,马霞.用于植物基因表达载体构建的质粒改造及其应用[J].生命科学研究.2018

[3].陈任,张虹,张芮,虎娟,周涛.用于植物多基因表达载体构建的质粒系统[J].分子植物育种.2018

[4].马旸,韩陈陈,李亦凡,汪扬,魏伟.pIRES-EGFP-GRK2-S670A突变质粒真核表达载体的构建与表达[J].安徽医科大学学报.2016

[5].李旭奎,姚佳,饶国洲.BimS真核质粒过表达载体构建及诱导ACC-2细胞凋亡作用[J].北京口腔医学.2016

[6].韩白玉,崔瀚之,燕翔,黄鹏,黄华龙.人Bcl-63'UTR区报告质粒及其表达载体的构建和功能检测[J].南方医科大学学报.2015

[7].吴艳凤,李德涛,郑倩,李雪,薛成军.DNMT3a基因shRNA质粒表达载体的构建及其沉默作用[J].中国老年学杂志.2015

[8].温志红,代艳,何爽.人MicroRNA-335阳性对照质粒真核表达载体的构建及意义[J].中国临床新医学.2015

[9].刘嵘,李一荣,胡丽华.pEGFP-C2-hTim-3真核表达载体的构建和hTim-3质粒稳定转染16HBE细胞株的建立[J].中国病原生物学杂志.2014

[10].王明菊.miR-134真核质粒表达载体和慢病毒载体的构建及其初步验证[D].重庆医科大学.2014

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