导读:本文包含了高水平庆大霉素耐药肠球菌论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:肠球菌,庆大霉素高水平耐药,饲养员及兽医,普通人群
高水平庆大霉素耐药肠球菌论文文献综述
王璜,罗小青,唐耀,陈小丽,俞道进[1]（2014）在《福州动物园工作人员及普通人员高水平耐庆大霉素肠球菌耐药表型检测》一文中研究指出为了解福州动物园饲养员和兽医以及普通人群的细菌耐药现状,选用肠球菌为指示菌,采用琼脂平板筛选法(ADSP法)筛选高水平耐庆大霉素肠球菌(HLGRE);根据美国临床实验室标准化协会(CLSI)推荐的微量肉汤稀释法测定耐药菌株对6种抗菌药物的耐药性;用PCR法对分离出的不同来源的高水平耐氨基糖苷类肠球菌进行菌种的鉴定。从所有37个样本中共筛选出15株HLGRE。其中动物园饲养员及兽医的分离率为62.50%,而普通人群的分离率为23.81%,差异显着。分离到的肠球菌中,以粪肠球菌为主要,根据药敏实验结果显示,不同人群的H1GRE均以红霉素和土霉素的耐药率最高,均达到100%;以氨苄西林和万古霉素的耐药率最低(本文来源于《野生动物学报》期刊2014年04期）
王蓉,吴农欣,陈端,单斌[2]（2014）在《肠球菌的耐药特征及高水平庆大霉素耐药基因流行分布》一文中研究指出目的了解临床分离的肠球菌的耐药特征以及高水平庆大霉素耐药肠球菌(HLGRE)的耐药基因流行分布。方法采用Vitek-2全自动微生物鉴定和药敏分析系统对肠球菌进行耐药情况分析,运用聚合酶链反应(PCR)方法检测HLGRE的耐药基因,并对部分PCR扩增产物进行DNA测序。结果 89株肠球菌中,对高水平庆大霉素耐药的屎肠球菌和粪肠球菌分别占50%和25.6%,对82株肠球菌进行高水平庆大霉素耐药基因的检测显示:aac(6')-Ie-aph(2")-Ia基因是HLGRE的唯一耐药基因,未检测到aph(2")-Ib和aph(2")-Id基因。结论准确及时发现肠球菌的耐药性和应用分子生物学技术检测高水平庆大霉素耐药基因可以为临床医师治疗肠球菌感染提供可靠依据。(本文来源于《国际检验医学杂志》期刊2014年06期）
陈小丽,罗小青,唐耀,王璜,洪海波[3]（2012）在《福州动物园动物高水平耐庆大霉素肠球菌耐药表型检测》一文中研究指出为了解福州动物园动物细菌耐药现状,选用肠球菌为指示菌,采用琼脂平板筛选法(ADSP法)筛选高水平耐庆大霉素肠球菌(HLGRE)。根据美国临床实验室标准化协会(CLSI)推荐的微量肉汤稀释法测定耐药菌株对6种抗菌药物的耐药性,用PCR法对分离出的不同来源的高水平耐氨基糖苷类肠球菌进行菌种鉴定。从动物园圈养野生动物共分离出78株HLGRE,不同动物来源的分离率不同,其中草食动物HLGRE分离率最低,占55.56%;肉食动物HLGRE分离率最高,占84.38%。药敏试验结果显示,不同动物来源的HLGRE均对红霉素和土霉素的耐药率最高,分别为100%和96.1%,对氨苄西林和万古霉素的耐药率最低。(本文来源于《动物医学进展》期刊2012年07期）
张健美,乔峰,胡辛欣,白银磊,李雪[4]（2012）在《肠球菌属细菌高水平庆大霉素耐药及其转座子的检测》一文中研究指出目的研究2006—2009年北京地区临床分离高水平庆大霉素耐药(HLGR)肠球菌属细菌的双功能修饰酶基因转座子结构。方法采用脑心肉汤微稀释法测定北京地区169株临床分离粪肠球菌和21株屎肠球菌的高水平庆大霉素耐药性,应用菌落PCR扩增方法检测HLGR菌株中双功能修饰酶基因及两端插入序列(IS256),分析转座子结构。结果 169株粪肠球菌中,111株(65.7%)为HLGR株,HLGR菌中97.3%含有双功能修饰酶基因,其中10.2%含有完整结构的转座子(双功能修饰酶基因两端均含有IS256插入序列),89.8%含有截断结构的转座子(缺失一端或两端的插入序列)。21株屎肠球菌中,15株(71.4%)为HLGR株,所有HLGR菌株均含有双功能修饰酶基因,其中13.3%含有完整结构的转座子,86.7%含有截断结构的转座子。结论 2006—2009年北京地区临床分离肠球菌HLGR率高,并且绝大多数HLGR株含双功能修饰酶基因,通常形成截断结构的转座子。(本文来源于《中国感染与化疗杂志》期刊2012年04期）
郑远鹏[5]（2009）在《动物源性高水平庆大霉素耐药肠球菌流行病学研究》一文中研究指出高水平庆大霉素耐药(HLGR)肠球菌是日益引起关注的细菌,为了解该细菌在我国兽医临床的流行病学情况,并分析影响这些耐药性形成的可能因素,采集来自福建省不同地区的3个猪场的307株肠球菌,以及来自一个鸡场不同年份的179猪肠球菌,通过筛选试验,分别分离出163株和78株HLGR肠球菌,采用美国临床和实验室标准协会(CLSI)推荐的微量肉汤稀释法测定这些HLGR肠球菌对六种抗生素的耐药性。结果显示：猪场来源的肠球菌中HLGR肠球菌的分离率为53.09%,这些HLGR肠球菌对土霉素、红霉素、万古霉素、氨苄西林、环丙沙星、氯霉素的耐药率分别为99.38%、100%、0%、1.23%、59.51%、79.14%；新旧猪场分离细菌耐药特性比较接近；不同猪群中以保育猪和哺乳仔猪分离的HLGR肠球菌对其它抗生素的耐药率较高,其次为哺乳母猪、怀孕母猪和育肥猪,公猪分离细菌的耐药率最低。鸡场于2007年、2008年分别分离出88株和91株肠球菌,其中HLGR肠球菌分别有35株和43株,分离率分别为39.77%和47.25%。2007年分离的HLGR肠球菌对土霉素、红霉素、万古霉素、氨苄西林、环丙沙星、氯霉素的耐药率分别为100%、100%、2.85%、8.57%、88.57%、74.29%；2007年分离的HLGR肠球菌对土霉素、红霉素、万古霉素、氨苄西林、环丙沙星、氯霉素的耐药率分别为100%、100%、4.65%、6.98%、81.40%、65.12%,同一猪场,不同年份的分离细菌的耐药特性没有发生本质的区别。以上结果表明HLGR肠球菌对常见抗生素表现出较高的耐药性,对万古霉素等也已出现中介细菌或耐药菌,兽医临床有必要采取措施控制HLGR肠球菌对其他抗生素的耐药性的增加。(本文来源于《福建农林大学》期刊2009-07-01）
王珊,郑波,杨维维,齐慧敏,肖永红[6]（2008）在《屎肠球菌高水平庆大霉素耐药基因研究》一文中研究指出目的研究我国临床分离高水平庆大霉素耐药屎肠球菌中庆大霉素耐药基因分类及其水平传递情况。方法采用PCR法检测庆大霉素耐药基因aac(6′)-Ie-aph(2″)-Ia、aph(2″)-Ib、aph(2″)-Ic、aph(2″)-Id和aph(3″)-Ⅲa,采用质粒酶切图谱分析耐药菌同源性,采用液体传递和固体传递法研究庆大霉素耐药基因水平传递情况。结果105株临床分离屎肠球菌中,76.2%(80/105)为高水平庆大霉素耐药,其中aac(6′)-Ie-aph(2″)-Ia基因阳性率为95.0%(76/80),aph(3″)-Ⅲa基因阳性率为78.8%(63/80),aph(2″)-Ib、aph(2″)-Ic、aph(2″)-Id基因皆阴性。这些高水平庆大霉素耐药屎肠球菌间大多无明显同源性。21.1%(16/76)菌株携带的aac(6′)-Ie-aph(2″)-Ia基因在屎肠球菌间固体传递,13.2%(10/76)菌株携带的aac(6′)-Ie-aph(2″)-Ia基因在屎肠球菌间液体环境中水平传递。结论本次研究中屎肠球菌中高水平庆大霉素耐药主要由aac(6′)-Ie-aph(2″)-Ia和aph(3″)-Ⅲa基因介导,这些菌株间没有明显同源性,且该基因可在屎肠球菌间水平传递。(本文来源于《中国感染与化疗杂志》期刊2008年03期）
瞿婷婷,张樱,俞云松,陈亚岗,魏泽庆[7]（2006）在《庆大霉素高水平耐药肠球菌的修饰酶基因检测与临床研究》一文中研究指出目的:了解庆大霉素高水平耐药肠球菌(HLGR)的耐药性、修饰酶类型和同源性,以指导临床合理用药。方法:用琼脂筛选法筛选出HLGR,采用K-B法测定其对14种抗菌药物的耐药性;用脉冲场凝胶电泳(PFGE)分析住院患者HLGR的同源性;PCR法检测HLGR的主要修饰酶基因。结果:64.2%的肠球菌为HLGR。HLGR对利奈唑胺、万古霉素和替考拉宁无耐药性。在HLGR中屎肠球菌合并β-内酰胺类抗生素和喹诺酮类药物耐药的分离率明显高于粪肠球菌。68株HLGR中63株aac(6’)-Ie-aph(2’)-Ia基因阳性(92.6%);3株与aph(2’)-Id基因有高同源性。在51株住院患者分离的HLGR中,屎肠球菌的PFGE图谱有8型(A~H),以A型为主;粪肠球菌的PFGE图谱有4型(A~D),呈多克隆散发。结论:HLGR已成为医院感染的重要耐药菌,其主要通过aac(6’)-Ie-aph(2’)-Ia基因编码的修饰酶造成对庆大霉素高度耐药。(本文来源于《浙江大学学报(医学版)》期刊2006年01期）
瞿婷婷,陈亚岗,俞云松,魏泽庆[8]（2004）在《庆大霉素高水平耐药肠球菌的耐药性及分子流行病学研究》一文中研究指出肠球菌是条件致病菌,可导致人体多脏器的感染,不仅可引起尿路感染、皮肤软组织感染,还可引起危及生命的腹腔感染、败血症、心内膜炎和脑膜炎等。近年来抗菌药物的广泛应用,使肠球菌对多种抗菌药物产生耐药,并成为导致医院感染的重要致病菌,为临床治疗带来了困难。而在耐药菌株中HLGR 占了较大的比例。本文对我院HLGR 流行情况、耐药性及耐药机制进行了研究,为HLGR 感染的防治提供基础。(本文来源于《2004年浙江省传染病、肝病学术会议论文汇编》期刊2004-10-01）
刘志远,许淑珍,马纪平[9]（2004）在《肠球菌庆大霉素高水平耐药机理的研究进展》一文中研究指出肠球菌已成为医院感染的重要病原。从70年代首次报道肠球菌高耐庆大霉素开始,肠球菌对庆大霉素等氨基糖苷类药物的高水平耐药不断增加,如希腊在1993～1994年粪肠球菌和屎肠球菌对庆大霉素高水平耐药(HLGR)发生率2 0 %左右,1996～1997年则分别(本文来源于《中华检验医学杂志》期刊2004年04期）
赵碎娟,朱建国,孔海琛[10]（2002）在《庆大霉素高水平耐药的肠球菌检测及其药敏结果分析》一文中研究指出目的 研究临床分离的对庆大霉素高水平耐药的肠球菌的检测方法和耐药性。方法 分别用仪器法、纸片扩散法、琼脂筛选法 3种方法对临床分离的 5 1株肠球菌进行庆大霉素高水平耐药性检测。结果 3种方法的检测结果基本一致 ,2 3株高耐株 ,2 8株非高耐株 ,高耐性肠球菌的耐药率远远大于非高水平耐药性肠球菌 ,未检出耐万古霉素的肠球菌。结论 临床上可根据各自的特点选用合适的方法对高耐性肠球菌进行检测 ,并根据药敏结果选择适当的药物(本文来源于《上海医学检验杂志》期刊2002年01期）
高水平庆大霉素耐药肠球菌论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的了解临床分离的肠球菌的耐药特征以及高水平庆大霉素耐药肠球菌(HLGRE)的耐药基因流行分布。方法采用Vitek-2全自动微生物鉴定和药敏分析系统对肠球菌进行耐药情况分析,运用聚合酶链反应(PCR)方法检测HLGRE的耐药基因,并对部分PCR扩增产物进行DNA测序。结果 89株肠球菌中,对高水平庆大霉素耐药的屎肠球菌和粪肠球菌分别占50%和25.6%,对82株肠球菌进行高水平庆大霉素耐药基因的检测显示:aac(6')-Ie-aph(2")-Ia基因是HLGRE的唯一耐药基因,未检测到aph(2")-Ib和aph(2")-Id基因。结论准确及时发现肠球菌的耐药性和应用分子生物学技术检测高水平庆大霉素耐药基因可以为临床医师治疗肠球菌感染提供可靠依据。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
高水平庆大霉素耐药肠球菌论文参考文献
[1].王璜,罗小青,唐耀,陈小丽,俞道进.福州动物园工作人员及普通人员高水平耐庆大霉素肠球菌耐药表型检测[J].野生动物学报.2014
[2].王蓉,吴农欣,陈端,单斌.肠球菌的耐药特征及高水平庆大霉素耐药基因流行分布[J].国际检验医学杂志.2014
[3].陈小丽,罗小青,唐耀,王璜,洪海波.福州动物园动物高水平耐庆大霉素肠球菌耐药表型检测[J].动物医学进展.2012
[4].张健美,乔峰,胡辛欣,白银磊,李雪.肠球菌属细菌高水平庆大霉素耐药及其转座子的检测[J].中国感染与化疗杂志.2012
[5].郑远鹏.动物源性高水平庆大霉素耐药肠球菌流行病学研究[D].福建农林大学.2009
[6].王珊,郑波,杨维维,齐慧敏,肖永红.屎肠球菌高水平庆大霉素耐药基因研究[J].中国感染与化疗杂志.2008
[7].瞿婷婷,张樱,俞云松,陈亚岗,魏泽庆.庆大霉素高水平耐药肠球菌的修饰酶基因检测与临床研究[J].浙江大学学报(医学版).2006
[8].瞿婷婷,陈亚岗,俞云松,魏泽庆.庆大霉素高水平耐药肠球菌的耐药性及分子流行病学研究[C].2004年浙江省传染病、肝病学术会议论文汇编.2004
[9].刘志远,许淑珍,马纪平.肠球菌庆大霉素高水平耐药机理的研究进展[J].中华检验医学杂志.2004
[10].赵碎娟,朱建国,孔海琛.庆大霉素高水平耐药的肠球菌检测及其药敏结果分析[J].上海医学检验杂志.2002