导读:本文包含了海藻糖负载论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:海藻糖,TiO2纳米管,成骨分化,抗炎
海藻糖负载论文文献综述
赵君[1]（2017）在《二氧化钛纳米管负载海藻糖BMP2抗炎和促进成骨双重作用》一文中研究指出目的为提高Ti植体的生物相容性和骨整合作用,在Ti植体表面进行表面处理来提高其抗炎和成骨的活性。方法在Ti植体表面通过电化学法制备Ti O2纳米管,将Lenti BMP2与海藻糖溶液冻干在植体表面。通过扫描电镜观察负载后的植体表面形态;检测植体表面负载的Lenti BMP2与海藻糖的释放速率;负载后的植体与骨髓基质细胞复合培养后的细胞增殖,成骨分化和抗炎作用;体内检测处理后的植体植入犬下颌骨后的骨整合效果。结果 Ti O2纳米管中负载了大量的海藻糖和Lenti BMP2,体外实验检测Lenti BMP2和海藻糖的持续缓释维持时间超过8天;当处理后的植体与骨髓基质细胞复合培养后对细胞的增殖无明显影响,但是定量PCR的结果显示骨髓基质细胞的相关成骨标志因子OCN,OPN,BSP,Run X2明显增高,提示处理后的植体表面释放的生物因子促进了骨髓基质细胞的成骨分化;同时抑制了炎症相关因子IL-1β和TNF-α的表达;体内结果显示骨整合率明显升高。结论二氧化钛纳米管负载海藻糖BMP2的表面处理可以促进Ti植体的抗炎和促进成骨的作用。(本文来源于《2017年国际正畸大会暨第十六次全国口腔正畸学术会议论文汇编》期刊2017-09-17）
姚根宏,张国栋,吴永政,王勇[2]（2014）在《冻干前负载海藻糖和葡萄糖对红细胞形态的影响》一文中研究指出目的观察红细胞负载海藻糖和葡萄糖前后形态学变化,为冷冻干燥红细胞提供依据。方法应用0.5 mol/L海藻糖和葡萄糖37℃负载红细胞6 h,在光镜和电镜下观察红细胞形态。结果光镜和电镜下,负载前红细胞形态呈正常的双凹圆盘形,极少数红细胞表面有不规则突起。负载后,大多数红细胞呈现有不规则突起的棘型红细胞形态。结论红细胞在负载前后形态学发生明显变化,应采取措施减少或阻止这种改变。(本文来源于《临床输血与检验》期刊2014年01期）
陈燕,陆志刚,白海[3]（2013）在《不同冻干保护体系对海藻糖负载红细胞冻干保存影响的研究》一文中研究指出本研究旨在评价冻干保护剂人血白蛋白、葡聚糖、聚乙烯吡咯烷酮和甘油对海藻糖负载后红细胞冰冻干燥保存的影响,筛选最佳冻干保护体系。将浓缩红细胞在37℃,浓度为800 mmol/L的海藻糖溶液中孵育7 h,经PBS液冲洗3遍后制成海藻糖负载的浓缩红细胞。对照组为海藻糖负载红细胞不添加保护剂,直接冻干;实验组将人血白蛋白、葡聚糖、聚乙烯吡咯烷酮、甘油等组成的冻干保护体系与海藻糖负载浓缩红细胞混合,两组样品在常温下平衡30 min,移入-80℃深低温冰箱,预冻24 h,入冻干机冻干处理24 h。用温度为37℃,6%羟乙基淀粉40注射液快速再水化样品,用氰化血红蛋白试剂盒测定血红蛋白溶血率,计算血红蛋白回收率,同时测定干燥样品含水量。结果表明:当样品含水量在3%-4%时,对照组冻干红细胞血红蛋白回收率为(33.57±2.89)%,白蛋白组血红蛋白回收率为(51.15±1.98)%,差异有显着性意义(P<0.05)。选用不同浓度的葡聚糖为冻干保护剂,血红蛋白回收率较对照组明显降低,随浓度增加,血红蛋白回收率逐渐升高,当浓度为36%时,血红蛋白回收率为(22.15±4.12)%,差异有显着性意义(P<0.05)。不同浓度的聚乙烯吡咯烷酮(PVP)组成的冻干保护体系,当浓度小于40%时,血红蛋白回收率明显低于对照组,差异有显着性意义(P<0.05)。10%甘油组血红蛋白回收率为(3.93±1.80)%,差异有显着性意义(P<0.05)。结论:人血白蛋白在海藻糖负载的冻干红细胞中发挥重要保护作用,葡聚糖与浓度小于40%PVP可削弱细胞内海藻糖的保护作用。液态的甘油不宜作为红细胞冰冻干燥保存的保护剂。(本文来源于《中国实验血液学杂志》期刊2013年03期）
陈麟凤,刘景汉,庄远,车辑,汪德清[4]（2012）在《海藻糖负载对人红细胞膜的影响》一文中研究指出本研究通过对海藻糖负载后红细胞膜各项理化指标检测,评价海藻糖对红细胞膜的保护作用。以海藻糖负载红细胞为实验组,未负载海藻糖红细胞为对照组,在不同渗透压的NaCl溶液中,检测2组红细胞膜渗透脆性变化,流式细胞术和红细胞变形仪分别检测2组红细胞膜的完整性和变形性。结果显示:对照组红细胞在渗透压为160 mOsm的NaCl溶液中溶血率为50%,而实验组红细胞出现50%溶血率的NaCl溶液渗透压为121.4 mOsm。流式细胞术检测结果显示,红细胞负载海藻糖后,细胞膜结合的AnnexinⅤ-FITC量很少,并且通过300 mOsm磷酸盐缓冲液的洗涤,破损细胞能被有效清除。负载后红细胞变形能力有所下降,2组之间存在显着差异(P<0.01)。结论:红细胞摄取海藻糖后能够在高渗环境中保持细胞膜稳定性和结构完整性。(本文来源于《中国实验血液学杂志》期刊2012年06期）
姚根宏,陈艳丽,唐雯,吴永政,栾建凤[5]（2012）在《不同负载时间下红细胞内海藻糖和葡萄糖含量比较》一文中研究指出目的探索适合海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的时间,为冷冻干燥红细胞提供基础。方法分别采用0、0.125、0.25、0.5和1 mol/L的海藻糖联合葡萄糖,在37℃下负载红细胞4、6和8 h。然后检测负载红细胞内海藻糖和葡萄糖的浓度。结果随着负载时间的延长,进入红细胞内的海藻糖和葡萄糖数量增加。并且随着负载液浓度的增加,红细胞内的海藻糖和葡萄糖数量增加。负载时间为8 h时,进入红细胞的葡萄糖比6 h组明显增加。但是,延长负载时间为8 h后,进入红细胞的海藻糖浓度与6 h组比较,差异无统计学意义。结论海藻糖联合葡萄糖负载红细胞6 h后,进入红细胞内的海藻糖和葡萄糖,能够满足冰冻干燥红细胞的负载要求。(本文来源于《医学研究生学报》期刊2012年06期）
姚根宏,吴永政,栾建凤,叶东,严京梅[6]（2012）在《不同温度下海藻糖联合葡萄糖负载红细胞后溶血情况》一文中研究指出目的探索海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的最适温度,为冷冻干燥红细胞提供基础。方法分别采用0、0.125、0.25、0.5和1mol/L的海藻糖联合葡萄糖在4℃、25℃和37℃负载红细胞6h。然后检测上清液中游离血红蛋白和乳酸脱氢酶含量。结果负载液浓度为1mol/L时,3种温度下的细胞溶血程度较重,即上清中游离血红蛋白和乳酸脱氢酶浓度较高。在浓度低于1mol/L时,25℃负载后,红细胞溶血程度较高。4℃和37℃负载时,上清中游离血红蛋白和乳酸脱氢酶浓度较低。结论在浓度小于1mol/L时,海藻糖联合葡萄糖在4℃和37℃情况下,负载红细胞后对细胞的损伤较小,能够满足冻存的负载要求。(本文来源于《临床输血与检验》期刊2012年02期）
姚根宏,汪海蓉,陈虎诚,吴永政,栾建凤[7]（2012）在《海藻糖联合葡萄糖负载红细胞不同时间下溶血情况》一文中研究指出目的:探索海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的最适时间,为冷冻干燥红细胞提供基础。方法:分别采用0、0.125、0.250、0.500和1.000mol/L的海藻糖联合葡萄糖在37℃负载红细胞4、6和8h。然后检测上清液中游离血红蛋白和乳酸脱氢酶含量。结果:负载液浓度为1mol/L时,3种负载时间下的细胞溶血程度较重,即上清中游离血红蛋白和乳酸脱氢酶浓度较高。在浓度低于1mol/L,负载时间为4、6h时,上清中游离血红蛋白和乳酸脱氢酶浓度较低。而负载时间延长至8h时,红细胞溶血程度较高。结论:在浓度小于1mol/L时,海藻糖联合葡萄糖在37℃情况下负载红细胞6h时对细胞的损伤较小,能够满足冻存要求。(本文来源于《临床血液学杂志(输血与检验版)》期刊2012年01期）
姚根宏,栾建凤,叶东,严京梅,朱培元[8]（2010）在《海藻糖联合葡萄糖负载红细胞后溶血效果》一文中研究指出目的:探讨海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的效果,为冷冻干燥红细胞提供新的保存剂。方法:分别采用0、0.125、0.25、0.5和1 mol/L的海藻糖、葡萄糖以及海藻糖联合葡萄糖37℃负载红细胞6 h。然后采用邻甲苯胺法检测上清液中游离血红蛋白含量。结果:负载液浓度为1 mol/L时,3组的细胞溶血程度较重,即上清中游离血红蛋白浓度较高。在浓度低于1 mol/L时,海藻糖联合葡萄糖组与单独海藻糖负载组溶血程度没有明显差别,但是2者低于葡萄糖组。结论:在浓度小于1 mol/L时,海藻糖联合葡萄糖负载红细胞后对细胞的损伤较小,能够满足冻存的负载要求。(本文来源于《临床血液学杂志(输血与检验版)》期刊2010年01期）
庄远,刘景汉,吕颖,陈麟凤,薛英娜[9]（2010）在《红细胞保存期对冻干前海藻糖负载量的影响研究》一文中研究指出探讨冻干前红细胞保存期对海藻糖负载量的影响,确定红细胞负载海藻糖的最佳条件。在37℃条件下,4℃保存0、24、48和72 h的红细胞在海藻糖浓度800 mmol/L的负载缓冲液中孵育7 h后,检测胞内海藻糖浓度和胞外外游离血红蛋白浓度。经相同条件孵育后,4组红细胞对海藻糖的摄取量基本相同,分别为(49.747±2.253)、(50.316±0.612)、(49.768±2.179)和(49.013±1.991)mmol/L,各组之间无统计学差异。4℃保存24、48和72 h的红细胞相对于新鲜红细胞,3组负载红细胞胞外游离血红蛋白明显增加,分别高达(8.473±2.138)g/L(P<0.05)、(12.697±1.787)g/L(P<0.01)和(14.036±2.796)g/L(P<0.01)。说明冻干前红细胞4℃保存期不会影响海藻糖负载量,红细胞负载海藻糖的主要影响因素仍为负载温度、负载时间和负载缓冲液中海藻糖浓度,若固定孵育条件,红细胞对海藻糖的胞内负载量基本保持不变。但随保存期的延长,红细胞在高渗环境中孵育更易损伤,溶血率明显增加。所以,为达到更好的海藻糖负载效果,应尽量采用新鲜红细胞进行处理。(本文来源于《科学技术与工程》期刊2010年04期）
姚根宏,栾建凤,叶东,严京梅,朱培元[10]（2010）在《海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的效果评价》一文中研究指出目的探讨海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的效果,为冷冻干燥红细胞提供新的保存剂。方法分别采用0、0.125、0.25、0.5和1mol/L的海藻糖、葡萄糖以及海藻糖联合葡萄糖37℃负载红细胞6h。分别检测负载后红细胞内海藻糖和葡萄糖的浓度。结果负载液中糖类浓度为0.125、0.25和0.5mol/L时,联合负载组与海藻糖或葡萄糖组负载后红细胞内的海藻糖和葡萄糖浓度的差异无统计学意义(P>0.05)。而负载液糖类浓度达到1mol/L时,联合负载组红细胞内海藻糖和葡萄糖的浓度明显低于海藻糖和葡萄糖单独负载组,差异有统计学意义(P<0.05)。结论浓度小于1mol/L时,海藻糖联合葡萄糖负载红细胞并不影响海藻糖和葡萄糖进入红细胞内,可以满足红细胞冷冻干燥的要求。(本文来源于《临床输血与检验》期刊2010年01期）
海藻糖负载论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的观察红细胞负载海藻糖和葡萄糖前后形态学变化,为冷冻干燥红细胞提供依据。方法应用0.5 mol/L海藻糖和葡萄糖37℃负载红细胞6 h,在光镜和电镜下观察红细胞形态。结果光镜和电镜下,负载前红细胞形态呈正常的双凹圆盘形,极少数红细胞表面有不规则突起。负载后,大多数红细胞呈现有不规则突起的棘型红细胞形态。结论红细胞在负载前后形态学发生明显变化,应采取措施减少或阻止这种改变。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
海藻糖负载论文参考文献
[1].赵君.二氧化钛纳米管负载海藻糖BMP2抗炎和促进成骨双重作用[C].2017年国际正畸大会暨第十六次全国口腔正畸学术会议论文汇编.2017
[2].姚根宏,张国栋,吴永政,王勇.冻干前负载海藻糖和葡萄糖对红细胞形态的影响[J].临床输血与检验.2014
[3].陈燕,陆志刚,白海.不同冻干保护体系对海藻糖负载红细胞冻干保存影响的研究[J].中国实验血液学杂志.2013
[4].陈麟凤,刘景汉,庄远,车辑,汪德清.海藻糖负载对人红细胞膜的影响[J].中国实验血液学杂志.2012
[5].姚根宏,陈艳丽,唐雯,吴永政,栾建凤.不同负载时间下红细胞内海藻糖和葡萄糖含量比较[J].医学研究生学报.2012
[6].姚根宏,吴永政,栾建凤,叶东,严京梅.不同温度下海藻糖联合葡萄糖负载红细胞后溶血情况[J].临床输血与检验.2012
[7].姚根宏,汪海蓉,陈虎诚,吴永政,栾建凤.海藻糖联合葡萄糖负载红细胞不同时间下溶血情况[J].临床血液学杂志(输血与检验版).2012
[8].姚根宏,栾建凤,叶东,严京梅,朱培元.海藻糖联合葡萄糖负载红细胞后溶血效果[J].临床血液学杂志(输血与检验版).2010
[9].庄远,刘景汉,吕颖,陈麟凤,薛英娜.红细胞保存期对冻干前海藻糖负载量的影响研究[J].科学技术与工程.2010
[10].姚根宏,栾建凤,叶东,严京梅,朱培元.海藻糖和葡萄糖联合负载红细胞的效果评价[J].临床输血与检验.2010